Referencia

Suero bovino en cultivo celular

En resumen

El suero bovino es la fracción líquida de la sangre coagulada de ganado vacuno y se añade al medio de cultivo al 5-10% para aportar los factores de crecimiento, hormonas, proteínas de transporte y de adhesión, lípidos y elementos traza que los medios basales no contienen. El suero fetal bovino (FBS) y el suero fetal de ternera (FCS) son dos nombres del mismo producto, obtenido del feto en el sacrificio de vacas gestantes; el suero de ternera recién nacida procede de terneros de menos de unos 20 días y el suero bovino de donante de rebaños de donantes controlados de entre 12 y 36 meses, y ambos contienen más inmunoglobulinas y menos factores de crecimiento que el FBS. Como el suero es un material biológico indefinido, con una variación sustancial entre lotes, cuestiones de bienestar animal sin resolver y una cadena de suministro inestable, los medios definidos sin suero y libres de origen animal se prefieren cada vez más siempre que la línea celular los tolere.

Qué aporta el suero al medio de cultivo

Un medio basal como el DMEM o el RPMI aporta sales, glucosa, aminoácidos y vitaminas. No aporta las señales que indican a una célula que debe crecer y, para la mayoría de las células primarias y muchas líneas establecidas, no basta por sí solo. El suero cubre esa carencia con una mezcla compleja e indefinida que contiene varios miles de proteínas distintas.

Las aportaciones funcionalmente importantes son:

  • Factores de crecimiento y hormonas -- factores de crecimiento similares a la insulina, PDGF, EGF, FGF, hidrocortisona, hormonas tiroideas y otras -- que impulsan la proliferación y la supervivencia.
  • Factores de adhesión, principalmente fibronectina y vitronectina, que permiten a las células dependientes de anclaje adherirse y extenderse sobre el plástico.
  • Proteínas de transporte, sobre todo albúmina y transferrina. La albúmina transporta ácidos grasos, hormonas y elementos traza y tampona frente a compuestos tóxicos; la transferrina aporta hierro, que es a la vez esencial y tóxico en forma libre.
  • Lípidos -- colesterol, fosfolípidos y ácidos grasos -- que muchas líneas celulares no pueden sintetizar en cantidad suficiente.
  • Inhibidores de proteasas, en especial la alfa-1-antitripsina y la alfa-2-macroglobulina, que neutralizan la tripsina residual tras el subcultivo. Por eso se usa medio con suero para detener la tripsinización.
  • Elementos traza y antioxidantes, incluido el selenio.
  • Protección física, sobre todo en cultivo agitado o con burbujeo, donde las proteínas séricas reducen el daño por cizalla y por burbujas.

La concentración habitual es del 10% (v/v) para el trabajo rutinario, aunque muchas líneas establecidas crecen bien al 5% y algunos procesos funcionan al 2% o menos. Reducir el suero allí donde la línea lo tolera ahorra dinero, disminuye el fondo proteico de sus muestras y reduce la exposición a la variación entre lotes.

La propiedad que define al suero es que es indefinido. Nadie, ni siquiera el proveedor, sabe exactamente qué contiene un lote dado. Eso es a la vez la razón de que funcione de forma tan general y la razón de que dé tantos problemas.

FBS, FCS y los demás sueros bovinos

El suero fetal bovino (FBS) y el suero fetal de ternera (FCS) son el mismo producto. Los dos nombres se usan indistintamente: FCS es más frecuente en Europa y FBS en América del Norte. No hay diferencia alguna en el material, y cualquier proveedor que los presente como grados distintos no está describiendo una distinción real. Esta es una de las preguntas más frecuentes sobre el suero, y la respuesta es realmente así de simple.

Los sueros bovinos se diferencian por la edad del animal, y esa diferencia determina todo lo demás:

El suero fetal bovino se obtiene del feto cuando se sacrifica para consumo una vaca gestante. Como el feto es inmunológicamente virgen y se desarrolla con rapidez, el FBS es pobre en inmunoglobulinas y complemento y rico en factores de crecimiento. Esa combinación -- fuerte promoción del crecimiento con una interferencia mínima de anticuerpos -- es la razón de que se convirtiera en la opción por defecto y de que alcance el precio más alto.

El suero de ternera recién nacida (NBCS) procede de terneros de menos de unos 20 días. Contiene más proteína total y bastante más IgG que el FBS, en gran parte de origen calostral, y menos factores de crecimiento. Es notablemente más barato y funciona bien con líneas robustas y poco exigentes.

El suero bovino de donante se obtiene de animales de entre 12 y 36 meses aproximadamente, mantenidos en un rebaño de donantes cerrado y controlado específicamente para la extracción de sangre. El rebaño controlado ofrece mejor consistencia y mejor documentación sanitaria que el material procedente de matadero.

El suero bovino adulto procede de ganado maduro y tiene el mayor contenido de inmunoglobulinas y la menor actividad promotora del crecimiento. Es el más económico y solo sirve para las aplicaciones más robustas.

Cómo elegir. No dé por hecho que necesita FBS. Muchas líneas establecidas desde hace tiempo se adaptaron históricamente al FBS y crecen perfectamente bien con suero de ternera recién nacida, a una fracción del coste y con menos presión sobre una cadena de suministro tensionada. El planteamiento correcto es ensayar: cultive su línea en paralelo con FBS y con un suero más barato durante varios pases y mida la velocidad de crecimiento, la morfología y el criterio funcional que le importe. Donde el suero más barato rinda igual, el cambio es dinero gratis. Donde no lo haga, ya sabrá por qué está pagando el FBS.

El origen geográfico importa por motivos regulatorios y no de rendimiento. Australia y Nueva Zelanda tienen el mejor estatus país frente a las encefalopatías espongiformes transmisibles y su suero se cotiza en consecuencia; los orígenes de Estados Unidos y de América del Sur también se usan mucho. Cuando el origen importa para su aplicación, debe estar documentado en el certificado de análisis y no darse por supuesto.

Procesado: filtración, inactivación por calor e irradiación

Esterilización por filtración. El suero se filtra a través de membranas sucesivas hasta 0.1 um, normalmente por triplicado, para eliminar bacterias y micoplasma. Se emplea un corte de 0.1 um en lugar del habitual de 0.2 um precisamente porque el micoplasma puede atravesar un filtro de 0.2 um.

Inactivación por calor: 56 °C durante 30 minutos. Esta es la condición estándar y su objetivo es estrecho: destruir la actividad del complemento dejando intactas en lo esencial las propiedades promotoras del crecimiento. El complemento es una cascada de proteínas séricas que puede lisar células cuando la activan los anticuerpos, algo relevante en los ensayos inmunológicos.

La inactivación por calor se aplica mucho más de lo necesario, en gran medida por costumbre heredada de protocolos antiguos. Es genuinamente necesaria en el trabajo sensible al complemento: ensayos inmunológicos y de citotoxicidad con anticuerpos, estudios de lisis mediada por complemento y algunos cultivos primarios de células inmunitarias. Suele ser innecesaria en el cultivo rutinario de líneas establecidas, y no sale gratis: el calentamiento degrada algunos factores de crecimiento, y el suero inactivado por calor produce de forma constante más precipitado y material floculento. Si inactiva por calor porque así lo decía el protocolo que heredó, merece la pena comprobar si supone alguna diferencia para sus células. Muchos laboratorios comprueban que no. Tenga en cuenta además que la inactivación por calor no es un paso de esterilización ni de eliminación viral; no sustituye a la filtración ni a la irradiación.

La irradiación gamma se aplica para reducir el riesgo de agentes adventicios, con procesos validados que suelen situarse en el intervalo de 25-45 kGy y reducciones descritas de 6-8 logaritmos para los virus bovinos y el micoplasma más comunes. Se realiza sobre suero congelado para limitar el daño a las proteínas. El suero irradiado es el estándar en aplicaciones con un requisito formal de seguridad viral y su uso se generaliza cada vez más. Se produce cierta pérdida de factores de crecimiento, de modo que un lote irradiado debe ensayarse en cuanto a rendimiento como cualquier otro, en lugar de suponerlo equivalente a su homólogo no irradiado.

El precipitado es normal. El material floculento o las partículas finas que aparecen en el suero descongelado son casi siempre fibrina y lipoproteína crioprecipitadas, no contaminación. Son inocuas y pueden ignorarse o eliminarse por sedimentación; no filtre usted mismo el suero para retirarlas, porque eso arrastra proteínas y arriesga contaminar un producto estéril. El suero inactivado por calor precipita más que el no tratado.

Ensayo de lotes, reserva y trazabilidad

El suero varía de un lote a otro. Dos lotes del mismo proveedor, el mismo origen y el mismo grado pueden sostener velocidades de crecimiento, eficiencias de siembra y comportamientos de diferenciación apreciablemente distintos. Para una línea celular sensible o un estudio largo, esta variación es una amenaza real para la reproducibilidad: cambiar de lote de suero a mitad de un proyecto puede desplazar los resultados de un modo muy difícil de diagnosticar después.

Procedimiento de ensayo de lotes:

  1. Solicite muestras. Pida al proveedor muestras de ensayo de 25-50 mL de tres a cinco lotes actuales, junto con el certificado de análisis de cada uno.
  2. Ensaye en paralelo frente a su lote actual como referencia, con sus propias células, su propio medio y sus propios ensayos. Los datos del proveedor no pueden sustituir a esto, porque se generaron con otras células.
  3. Mida lo que a usted le importa. Como mínimo: velocidad de crecimiento a lo largo de varios pases, eficiencia de siembra o de clonación y densidad viable final. Añada el criterio funcional del que dependa su trabajo: diferenciación, eficiencia de transfección, rendimiento vírico, título de anticuerpo, morfología. Un lote que sostiene un crecimiento rápido pero bloquea la diferenciación es un mal lote para un laboratorio de diferenciación.
  4. Haga suficientes pases. Los ensayos de un solo pase pasan por alto los efectos acumulativos. De tres a cinco pases es un mínimo razonable.
  5. Reserve el lote ganador. Los proveedores mantienen reservada una cantidad durante un periodo definido. Reserve lo suficiente para el proyecto o, idealmente, para un año de trabajo.
  6. Solape la transición. Cuando se acabe un lote reservado, ensaye el sustituto en paralelo frente al antiguo antes de cambiar, en vez de cambiar y esperar que salga bien.

Certificado de análisis. Revíselo en lugar de archivarlo. Entradas útiles son la endotoxina (habitualmente especificada por debajo de 10 EU/mL, con grados de baja endotoxina por debajo de 1 EU/mL), la hemoglobina como indicador de hemólisis durante la extracción, la proteína total, la osmolalidad, el pH, los ensayos de esterilidad y micoplasma, los ensayos víricos y el país de origen.

Trazabilidad. La International Serum Industry Association gestiona un programa de certificación de trazabilidad destinado a documentar la cadena desde el matadero hasta el usuario final mediante auditoría independiente de terceros. Esto importa porque el etiquetado incorrecto y la adulteración del suero -- producto vendido como un grado superior o un origen más favorable del que realmente tiene -- han sido un problema documentado en este mercado, impulsado por las grandes diferencias de precio entre orígenes. Compre a proveedores que puedan documentar el origen y la cadena de custodia, y desconfíe de un lote inusualmente barato de suero de origen premium.

Almacenamiento y manipulación. Consérvelo a -20 °C. Descongélelo a 2-8 °C durante la noche, o a temperatura ambiente o 37 °C con agitación suave y periódica; no deje el suero a 37 °C durante periodos prolongados ni lo descongele a temperaturas superiores. Reparta en alícuotas en la primera descongelación en volúmenes de un solo uso, porque los ciclos repetidos de congelación y descongelación degradan el suero y generan precipitado. Protéjalo de una exposición prolongada a la luz, que degrada la riboflavina y algunos otros componentes.

De dónde procede el suero fetal bovino, y los argumentos en su contra

De dónde procede el suero fetal bovino. El FBS es un subproducto de la industria cárnica. No se produce criando animales para obtener suero. Cuando se sacrifica para carne una vaca que resulta estar gestante, el útero y el feto se retiran en el matadero y se extrae sangre del feto, que después se procesa hasta obtener suero: se coagula, se centrifuga, se filtra y se congela. El país de origen se refiere al lugar donde tuvo lugar esa extracción. Esta sección responde a la pregunta del origen de forma directa, porque los investigadores la hacen y una página de proveedor que la esquiva no sirve como referencia.

El procedimiento de extracción. El suero fetal bovino es un subproducto de la industria cárnica. Cuando se sacrifica una vaca que resulta estar gestante, se retira el feto y la sangre se extrae por punción cardíaca del feto sin anestesiar. La cuestión central de bienestar animal es si el feto es capaz de experimentar el procedimiento. La posición científica no está cerrada, y depende de la etapa de desarrollo y de si el feto permanece inconsciente tras la separación de la circulación materna. Organismos como el NC3Rs han señalado que el proceso no está regulado de forma exhaustiva -- la Directiva 2010/63/UE relativa a la protección de los animales utilizados para fines científicos no cubre con claridad la extracción fetal -- y que hay pocas pruebas de que las directrices existentes estén protegiendo a los animales en la práctica. Científicos razonables sostienen opiniones distintas sobre la gravedad del problema, pero no es una polémica fabricada ni está resuelta.

El argumento de la reproducibilidad es independiente de la ética y, para muchos laboratorios, resulta más persuasivo de forma inmediata. El suero es indefinido y variable. Distintos lotes contienen concentraciones distintas de cientos de moléculas bioactivas. Los registros históricos muestran que esto se reconoció muy pronto: Puck observó que en el suero aparecen factores tóxicos en grado variable, que hay que ensayar cada lote y que el suero recogido en algunas estaciones del año había que descartarlo en una proporción elevada. Si un lote cualquiera puede cambiar el comportamiento de las células, entonces el suero es una variable no controlada situada en el centro de prácticamente todos los experimentos, y además imposible de describir de forma significativa en un apartado de métodos. "10% de FBS" no describe casi nada.

Suministro y precio. El suministro de FBS está ligado al volumen de sacrificio de vacuno y a la incidencia de gestación en el sacrificio, y ninguno de los dos responde a la demanda de las ciencias de la vida. El mercado ha sufrido subidas de precio y desabastecimientos repetidos. Para un proceso que se está escalando hacia la fabricación, esto es un riesgo de negocio real y no una simple molestia.

Dirección regulatoria. Los reguladores y los financiadores esperan cada vez más materias primas libres de origen animal en la fabricación de productos biológicos y de terapias celulares, tanto para eliminar el riesgo de agentes adventicios como para mejorar el control del proceso. Un proceso de investigación construido sobre suero acabará teniendo que rediseñarse sin él si avanza hacia la clínica, y hacerlo tarde resulta bastante más caro que hacerlo pronto.

Alternativas, valoradas con honestidad.

  • Los medios químicamente definidos y sin suero son la opción más sólida allí donde existen para su tipo celular. Las líneas CHO, HEK293, de hibridoma, de insecto y muchas otras líneas de trabajo cuentan con excelentes medios comerciales sin suero y libres de origen animal, y en entornos de bioproceso estos superan de forma habitual al medio con suero en rendimiento, consistencia y purificación posterior. Para estas células, el argumento a favor del suero está esencialmente cerrado.
  • Los suplementos definidos -- albúmina humana recombinante, insulina recombinante, transferrina recombinante, mezclas ITS, lípidos químicamente definidos -- reconstruyen las funciones clave del suero a partir de componentes conocidos. Así es como se construye la mayoría de las formulaciones sin suero.
  • El lisado plaquetario humano (hPL) es un sustituto bien establecido del FBS en el cultivo de células estromales mesenquimales, y a menudo sostiene una expansión más rápida que el FBS. Es de origen humano y no plenamente definido, de modo que cambia un material variable por otro, pero elimina los problemas éticos y de seguridad de origen bovino y se usa en el ámbito clínico.
  • La reducción del suero es un paso intermedio infrautilizado. Muchas líneas toleran el 5% o el 2% sin penalización medible. Está disponible de inmediato, no requiere trabajo de adaptación y reduce el coste y la variabilidad desde hoy mismo.

La limitación honesta. No existen alternativas sin suero para todos los tipos celulares, y la adaptación lleva tiempo y puede fracasar. Algunas células primarias y algunas líneas poco caracterizadas siguen necesitando suero de verdad, y fingir lo contrario no ayuda a nadie. La postura defendible no es que el suero no deba usarse nunca, sino que debería ser una elección deliberada para las células que lo necesitan en lugar de una opción por defecto aplicada a las que no lo necesitan; y que cualquier línea que avance hacia un trabajo escalado o clínico debería sacarse del suero tan pronto como sea practicable.

Adaptación de células a medio sin suero

La adaptación suele ser sencilla en líneas de producción adaptadas a suspensión y más difícil en células primarias adherentes.

La adaptación secuencial es el enfoque estándar y de menor riesgo. Reduzca el suero de forma escalonada a lo largo de los pases -- por ejemplo 10%, 5%, 2.5%, 1%, 0.5%, 0% --, dejando que el cultivo recupere su tiempo de duplicación normal y una viabilidad superior al 90% antes de cada nueva reducción. Cuente con que el proceso lleve varias semanas. No pase al siguiente paso mientras el cultivo siga sufriendo.

La adaptación directa -- pasar de golpe a medio sin suero -- es más rápida y a veces funciona, sobre todo en líneas robustas en suspensión con un medio comercial bien ajustado. Mantenga en paralelo un cultivo de reserva con suero, porque el modo de fallo consiste en perder el cultivo.

Puntos prácticos:

  • Banque las células antes y después. Congele viales en el punto de partida por si la adaptación fracasa, y banque la línea adaptada en cuanto sea estable. Perder una línea adaptada con éxito es un error doloroso y evitable.
  • Espere una fase de crecimiento más lento. Una caída transitoria de la velocidad de crecimiento durante la adaptación es normal; una caída sostenida significa que el escalón fue demasiado grande.
  • La adhesión puede cambiar. Las células adherentes que pierden el suero pierden fibronectina y vitronectina, de modo que pueden necesitar una superficie recubierta -- vitronectina recombinante, laminina o una matriz de adhesión definida -- en lugar de plástico desnudo.
  • Hay que replantear la tripsinización. Sin suero no hay inhibidores de proteasas que neutralicen la tripsina, así que use un inhibidor de tripsina definido o un reactivo de disociación recombinante, y no se fíe solo de la dilución.
  • La protección frente a la cizalla importa más. Los cultivos en suspensión sin suero suelen necesitar un tensioactivo como el poloxámero 188 para proteger del daño por burbujeo y agitación. La mayoría de los medios comerciales sin suero incluyen uno; compruébelo antes de darlo por hecho.
  • Revalide sus ensayos. Retirar el suero cambia el fondo proteico, cambia las concentraciones libre y unida de todo lo que añada y puede cambiar la potencia aparente en un ensayo de dosis-respuesta. No compare directamente resultados sin suero con datos históricos obtenidos con suero sin comprobarlo antes.

Con suero, sin suero, libre de origen animal y químicamente definido: los términos no son intercambiables. Se usan con frecuencia de forma laxa, y las distinciones importan a la hora de especificar un proceso:

Término Qué significa Qué no garantiza
Con suero Medio suplementado con suero, normalmente 5-10% de FBS Nada está definido; la composición varía según el lote
Sin suero No se añade suero Puede contener aún componentes de origen animal, como albúmina bovina o hidrolizados
Libre de origen animal (AOF) / libre de componentes animales (ACF) Ningún material de origen animal en toda la formulación No necesariamente definido del todo: puede contener hidrolizados vegetales de composición variable
Libre de xenocomponentes (xeno-free) Ningún material animal no humano; se permiten componentes de origen humano, como el lisado plaquetario humano No es libre de origen animal en sentido estricto, ni está definido
Químicamente definido (CD) Todos los componentes son conocidos y están a una concentración conocida; sin hidrolizados ni extractos indefinidos Las proteínas recombinantes se siguen produciendo biológicamente y el ensayo de lotes sigue siendo pertinente

La jerarquía práctica va de medio con suero a medio sin suero, después libre de origen animal y después químicamente definido, y cada escalón aporta más control y suele costar más. Un medio puede estar libre de suero y contener aún albúmina bovina, y un medio libre de origen animal puede contener aún un hidrolizado vegetal indefinido; ambas son fuentes habituales de confusión al especificar un proceso. Consulte la referencia sobre medio químicamente definido para un tratamiento más completo de las formulaciones definidas.

Comparación de los sueros bovinos y sus alternativas
SuplementoOrigenContenido de inmunoglobulinasActividad promotora del crecimiento¿Definido?Uso habitual
Suero fetal bovino (FBS)Feto bovino en el sacrificio de vacas gestantesBajoEl más altoNoOpción por defecto para células exigentes y primarias al 5-10%
Suero fetal de ternera (FCS)Idéntico al FBS -- solo cambia el nombreBajoEl más altoNoEl mismo producto; FCS es el término habitual en Europa
Suero de ternera recién nacida (NBCS)Terneros de menos de unos 20 díasAlto, en gran parte IgG calostralModeradaNoLíneas establecidas robustas donde el coste importa
Suero bovino de donanteRebaño de donantes cerrado y controlado, de unos 12-36 mesesAltoModeradaNoAplicaciones que necesitan mejor consistencia entre lotes que el suero de matadero
Suero bovino adultoGanado maduroEl más altoLa más bajaNoAplicaciones poco exigentes y uso a granel guiado por el coste
Medio sin suero químicamente definidoComponentes sintéticos y recombinantesNingunoDepende de la línea celular, a menudo igual o mejorCHO, HEK293, insecto, hibridoma y otras líneas de producción adaptadas
Lisado plaquetario humano (hPL)Concentrados de plaquetas humanas agrupadosHumanas, variableAlta, a menudo superior al FBS en células estromales mesenquimalesNoExpansión de células estromales mesenquimales, incluida la fabricación clínica

Preguntas frecuentes

¿Qué es el suero en cultivo celular?

El suero es la fracción líquida de la sangre coagulada y se añade al medio basal habitualmente al 5-10% para aportar lo que le falta a un medio basal: factores de crecimiento y hormonas que indican a las células que deben dividirse, proteínas de adhesión como la fibronectina y la vitronectina, proteínas de transporte como la albúmina y la transferrina, lípidos, inhibidores de proteasas que neutralizan la tripsina tras el subcultivo y protección física frente a la cizalla. Su propiedad definitoria es que es indefinido: nadie, ni siquiera el proveedor, sabe exactamente qué contiene un lote dado.

¿De dónde procede el suero fetal bovino?

El FBS es un subproducto de la industria cárnica y no un producto de granja. Cuando se sacrifica para carne una vaca que resulta estar gestante, el feto se retira en el matadero y se le extrae sangre por punción cardíaca, que después se coagula, centrifuga, filtra y congela hasta obtener suero. El país de origen que figura en el certificado de análisis se refiere al lugar donde tuvo lugar esa extracción, y importa por el estatus país frente a las encefalopatías espongiformes transmisibles, no por el rendimiento.

¿Cuál es la diferencia entre FBS y FCS?

Ninguna. El suero fetal bovino y el suero fetal de ternera son dos nombres del mismo producto: FCS es más frecuente en Europa y FBS en América del Norte. Cualquier proveedor que los presente como grados distintos no está describiendo una distinción real.

¿Qué concentración de FBS debo usar en cultivo celular?

El 10% (v/v) es la opción rutinaria por defecto, pero muchas líneas celulares establecidas crecen igual de bien al 5%, y algunos procesos funcionan al 2% o menos. Merece la pena ensayar una concentración más baja en su propia línea, ya que reduce el coste, disminuye el fondo proteico de sus muestras y reduce la exposición a la variación entre lotes.

¿Por qué se inactiva el FBS por calor a 56 °C durante 30 minutos?

El objetivo es destruir la actividad del complemento, una cascada de proteínas séricas que puede lisar células cuando la activan los anticuerpos, dejando en gran medida intactas las propiedades promotoras del crecimiento. Es realmente necesaria en el trabajo inmunológico sensible al complemento, pero suele ser innecesaria en el cultivo rutinario de líneas establecidas, y degrada algunos factores de crecimiento y aumenta el precipitado.

¿La inactivación por calor esteriliza el suero?

No. La inactivación por calor a 56 °C durante 30 minutos no esteriliza el suero y no es un paso de eliminación viral. La esterilidad procede de la triple filtración hasta 0.1 um -- un corte más fino que el habitual de 0.2 um, elegido precisamente porque el micoplasma puede atravesar un filtro de 0.2 um -- y la reducción del riesgo vírico procede de la irradiación gamma.

¿Qué es el suero bovino de ternera y en qué se diferencia del suero fetal bovino?

El suero de ternera recién nacida procede de terneros de menos de unos 20 días y contiene más proteína total y bastante más IgG, en gran parte calostral, junto con menos factores de crecimiento que el FBS. El FBS se obtiene del feto inmunológicamente virgen, por lo que es pobre en inmunoglobulinas y rico en factores de crecimiento. El NBCS es bastante más barato y funciona bien con líneas establecidas robustas.

¿Por qué hay un precipitado blanco en mi suero descongelado?

El material floculento o las partículas finas en el suero descongelado son casi siempre fibrina y lipoproteína crioprecipitadas, no contaminación microbiana. Son inocuas y pueden dejarse sedimentar o ignorarse. No filtre usted mismo el suero para retirarlas, porque eso arrastra proteínas y arriesga comprometer un producto estéril. El suero inactivado por calor precipita más que el no tratado.

¿Cómo debe almacenarse y descongelarse el FBS?

Consérvelo a -20 °C y descongélelo durante la noche a 2-8 °C, o bien a temperatura ambiente o a 37 °C con agitación suave y periódica. No deje el suero a 37 °C durante periodos prolongados. Reparta en alícuotas de un solo uso en la primera descongelación, porque los ciclos repetidos de congelación y descongelación degradan el producto y generan precipitado.

¿Cómo ensayo y reservo un lote de suero?

Solicite muestras de 25-50 mL de tres a cinco lotes actuales con sus certificados de análisis, y después ensáyelos en paralelo frente a su lote existente usando sus propias células y ensayos a lo largo de tres a cinco pases. Mida la velocidad de crecimiento, la eficiencia de siembra y el criterio funcional del que dependa su trabajo, y pida después al proveedor que reserve suficiente cantidad del lote ganador para el proyecto o para un año de trabajo.

¿La irradiación gamma daña el suero?

La irradiación gamma validada, habitualmente en el intervalo de 25-45 kGy y realizada sobre suero congelado, reduce los agentes adventicios en 6-8 logaritmos según los datos publicados, con un daño limitado al rendimiento del suero. Sí se produce cierta pérdida de factores de crecimiento, de modo que un lote irradiado debe ensayarse en cuanto a rendimiento en lugar de suponerlo equivalente a su homólogo no irradiado.

¿Por qué importa el país de origen del suero?

El origen importa por motivos regulatorios y por el estatus país frente a las encefalopatías espongiformes transmisibles, no por el rendimiento. Australia y Nueva Zelanda tienen el mejor estatus y se cotizan en consecuencia, y los orígenes de Estados Unidos y de América del Sur también se usan mucho. Como la diferencia de precio entre orígenes es grande, el etiquetado incorrecto ha sido un problema documentado, así que el origen debe constar en el certificado de análisis y respaldarse con la trazabilidad de la cadena de suministro.

¿Qué problemas éticos plantea el suero fetal bovino?

El FBS se obtiene por punción cardíaca del feto bovino sin anestesiar cuando se sacrifica una vaca gestante, y no está científicamente resuelto si el feto puede experimentar el procedimiento. Organismos como el NC3Rs han señalado que la extracción fetal no está cubierta de forma exhaustiva por la legislación de bienestar animal, como la Directiva 2010/63/UE. Junto a esto, la composición indefinida y variable del suero es un problema real de reproducibilidad, independiente de la cuestión ética.

¿Qué puede sustituir al FBS en cultivo celular?

Para líneas de producción adaptadas, como CHO, HEK293, hibridoma y células de insecto, los medios comerciales sin suero químicamente definidos son maduros y a menudo superan al suero en rendimiento y consistencia. Suplementos definidos como la albúmina humana recombinante, la insulina y la transferrina recombinantes y las mezclas ITS reconstruyen las funciones clave del suero. El lisado plaquetario humano está bien establecido para células estromales mesenquimales. No existe un sustituto universal para todos los tipos de células primarias, así que la adaptación debe ensayarse caso por caso.

¿Cómo adapto las células a un medio sin suero?

El enfoque estándar es la adaptación secuencial: reducir el suero de forma escalonada, por ejemplo 10%, 5%, 2.5%, 1%, 0.5%, 0%, dejando que el cultivo recupere su tiempo de duplicación normal y una viabilidad superior al 90% antes de cada nueva reducción, a lo largo de varias semanas. Banque las células antes de empezar por si la adaptación fracasa, y banque la línea adaptada en cuanto sea estable. Cuente con necesitar un inhibidor de tripsina definido, posiblemente una superficie recubierta para células adherentes y un tensioactivo protector frente a la cizalla en suspensión.

¿Cuál es la diferencia entre un medio químicamente definido y un medio con suero?

Un medio químicamente definido contiene solo componentes conocidos y presentes a concentraciones conocidas, sin hidrolizados ni extractos indefinidos, mientras que un medio con suero incorpora varios miles de proteínas séricas a concentraciones que varían de un lote a otro. El medio definido aporta reproducibilidad, una purificación posterior más sencilla y un proceso controlable; el medio con suero aporta un soporte de crecimiento amplio e indulgente para células que no se han adaptado. Tenga en cuenta que sin suero, libre de origen animal y químicamente definido son tres afirmaciones distintas: un medio sin suero puede contener aún albúmina bovina.

¿Cuál es la diferencia entre un medio libre de origen animal y uno de origen animal?

Los medios de origen animal contienen material procedente de animales: suero, albúmina bovina, tripsina porcina o hidrolizados de origen animal. Los medios libres de origen animal o libres de componentes animales no contienen ninguno de estos y usan en su lugar proteínas recombinantes y componentes sintéticos o de origen vegetal. La condición de libre de xenocomponentes es una afirmación distinta y más débil, que permite material de origen humano como el lisado plaquetario humano. Estar libre de origen animal elimina una vía de entrada de agentes adventicios y se exige cada vez más en la fabricación de productos biológicos y terapias celulares.

Productos para esta aplicación

Páginas de referencia relacionadas

  • Albúmina humana recombinante en cultivo celular La albúmina sérica humana recombinante (rHSA) es una proteína no glucosilada de 585 aminoácidos y 66,5 kDa producida en levaduras como *Pichia pastoris* o en arroz transgénico, en lugar de purificarse a partir de plasma humano, y se emplea como suplemento libre de origen animal en medios de cultivo sin suero y químicamente definidos. En cultivo actúa como transportador de ácidos grasos, lípidos, hormonas y oligoelementos, como antioxidante gracias al tiol libre de su cisteína-34, como secuestrante de metales tóxicos y del exceso de ácidos grasos libres, y como proteína tensioactiva que protege frente a la cizalla en cultivos agitados y con burbujeo. Las concentraciones de trabajo habituales son de 0,1-10 g/L, con mayor frecuencia de 0,5-5 g/L, y se suministra normalmente como disolución de 200 mg/mL (20 %). Su rendimiento depende en gran medida de lo que lleve unido, de modo que las preparaciones cargadas de ácidos grasos y las libres de ácidos grasos se comportan de forma bastante distinta.
  • Insulina humana recombinante en el cultivo celular La insulina humana recombinante es una proteína de dos cadenas, de 51 aminoácidos y 5.8 kDa, que se emplea como suplemento esencial en medios sin suero y químicamente definidos, donde impulsa la captación de glucosa y aminoácidos, la síntesis de proteínas y lípidos y la supervivencia celular. Se produce en *E. coli* o en levaduras en lugar de extraerse de páncreas animal, por lo que es libre de origen animal, y suele suministrarse como polvo seco estabilizado con zinc. La concentración de trabajo habitual es de 5-10 ug/mL, la que aporta un suplemento ITS estándar a 1X, unas mil veces por encima de los niveles fisiológicos de insulina: a esa concentración la insulina actúa en buena medida a través del receptor de IGF-1 además del suyo propio. Como la insulina es poco soluble cerca del pH neutro, el polvo debe disolverse en ácido clorhídrico o acético diluido antes de diluirlo en el medio.
  • Medio de congelación celular y protocolos de criopreservación El medio de congelación celular es una disolución con crioprotector que permite a las células sobrevivir a la congelación y al almacenamiento prolongado; lo más habitual es prepararlo con un medio basal o suero más un 5-10 % de dimetilsulfóxido (DMSO), siendo el 10 % el punto de partida estándar. El DMSO penetra en la célula y modifica la forma en que se congela el agua, evitando los cristales de hielo intracelulares que de otro modo romperían las membranas durante el enfriamiento. Las células se congelan a una velocidad controlada de aproximadamente 1 C por minuto hasta -80 C y después se trasladan a la fase de vapor del nitrógeno líquido, ya que el almacenamiento prolongado exige temperaturas por debajo de unos -135 C para impedir la recristalización del hielo. La descongelación es lo contrario: lo más rápida posible en un baño de agua a 37 C, seguida de una dilución inmediata para eliminar el DMSO, que resulta tóxico para las células por encima de las temperaturas de congelación.
  • Penicilina-estreptomicina y antibiótico-antimicótico en cultivo celular La penicilina-estreptomicina, abreviada universalmente como Pen-Strep, se suministra como solución estéril 100X con 10000 unidades/mL de penicilina G y 10000 ug/mL de estreptomicina, y se diluye 1:100 en el medio para obtener una concentración de trabajo de 100 U/mL de penicilina y 100 ug/mL de estreptomicina. La penicilina bloquea la síntesis de la pared bacteriana y cubre sobre todo organismos grampositivos; la estreptomicina se une a la subunidad ribosómica 30S bacteriana y cubre sobre todo gramnegativos, de modo que la pareja ofrece una cobertura antibacteriana amplia. El antibiótico-antimicótico (anti-anti) es la misma combinación más 25 ug/mL de anfotericina B a 100X, lo que da 0.25 ug/mL en uso para cubrir hongos. Ninguno de los dos controla el micoplasma, y los grandes bancos celulares, incluido ATCC, desaconsejan el uso rutinario de antibióticos porque enmascara la contaminación de bajo nivel en lugar de prevenirla.
  • Azul de tripano y el ensayo de viabilidad por exclusión de colorante El azul de tripano es un colorante diazoico que se emplea al 0.4% (p/v) para separar las células vivas de las muertas mediante exclusión de colorante: una membrana plasmática intacta impide la entrada del colorante cargado, de modo que las células viables permanecen transparentes y refringentes, mientras que las células con la membrana dañada lo incorporan y se tiñen de azul. En la práctica, la suspensión celular se mezcla 1:1 con azul de tripano al 0.4%, se carga en un hemocitómetro o en un contador celular automático y se cuenta en un plazo de 3-5 minutos para obtener a la vez una concentración celular y un porcentaje de viabilidad. Como solo informa sobre la integridad de la membrana, el azul de tripano cuenta las células que ya han muerto: no detecta células apoptóticas ni metabólicamente deterioradas que aún conservan la membrana intacta, por lo que da valores más altos que los ensayos de viabilidad metabólicos o por citometría de flujo.
  • Inactivación por calor del suero fetal bovino (FBS) La inactivación por calor del suero fetal bovino es una incubación controlada de 30 minutos a 56 grados C que destruye las proteínas termolábiles de la cascada del complemento antes de añadir el suero al medio de cultivo. El suero se descongela, se atempera a 37 grados C, se traslada a un baño a 56 grados C, se mantiene exactamente 30 minutos contados desde el momento en que el propio suero alcanza la temperatura, con agitación suave cada 5-10 minutos, y después se enfría de inmediato y se reparte en alícuotas. Para el cultivo rutinario de líneas celulares establecidas suele ser innecesaria, porque la actividad del complemento en el suero fetal es baja y el calentamiento degrada además factores de crecimiento lábiles; sigue siendo práctica habitual en los ensayos inmunológicos y con células sensibles al complemento.
  • Medio químicamente definido Un medio químicamente definido es un medio de cultivo celular en el que se conocen la identidad y la concentración de todos sus componentes: sin suero, sin hidrolizados de proteínas y sin extractos indefinidos. Puede contener proteínas, siempre que sean recombinantes y de secuencia y concentración conocidas; por eso «químicamente definido» y «sin proteínas» son categorías distintas y no sinónimos. Los medios químicamente definidos eliminan la variabilidad entre lotes, el riesgo de agentes adventicios y la carga regulatoria asociados al suero, y son el estándar en la producción biofarmacéutica con sistemas CHO, HEK293 e hibridomas.
  • Subcultivo celular (pase) El subcultivo celular, también llamado pase, es el traspaso de las células de un cultivo que se aproxima a la confluencia a recipientes nuevos con medio fresco para que el crecimiento pueda continuar. Las células adherentes se despegan primero, normalmente con Trypsin-EDTA al 0.25% o al 0.05% o con un reactivo de disociación no enzimático, y se vuelven a sembrar a una densidad menor fijada por una proporción de división como 1:4; las células en suspensión simplemente se diluyen en medio fresco sin ningún paso de disociación. La mayoría de las líneas celulares adherentes continuas se subcultivan al 70-80% de confluencia, lo que suele significar dos o tres pases por semana.
  • Trypsin-EDTA El Trypsin-EDTA es un reactivo de disociación celular que combina la tripsina, una serina proteasa que corta enlaces peptídicos por el lado C-terminal de los residuos de lisina y arginina en las proteínas de superficie y de la matriz, con el quelante EDTA, que fija los iones calcio y magnesio que necesitan las moléculas de adhesión celular. Se suministra en una solución salina equilibrada sin calcio ni magnesio, lo más habitual al 0.05% de tripsina (0.5 g/L) para líneas celulares de rutina y al 0.25% (2.5 g/L) para células firmemente adheridas y cultivos primarios. El uso típico son 2-5 minutos a 37 °C, seguidos de inmediato por la neutralización con medio con suero o con un inhibidor de tripsina definido.
  • Ensayo de endotoxinas en el cultivo celular El ensayo de endotoxinas mide el lipopolisacárido bacteriano (LPS) presente en el agua de laboratorio, los medios, los sueros y los reactivos, y se expresa en unidades de endotoxina por mililitro (EU/mL), donde 1 EU equivale aproximadamente a 0.1–0.2 ng de la endotoxina de E. coli del estándar de referencia. Los métodos oficiales son el ensayo LAL (lisado de amebocitos de Limulus) en sus formatos de gelificación, turbidimétrico y cromogénico, recogidos en el capítulo USP <85>, y el ensayo con Factor C recombinante (rFC), libre de origen animal, recogido en USP <86>; los formatos cinéticos cuantifican hasta cerca de 0.001–0.005 EU/mL. Los límites prácticos en cultivo celular son 0.25 EU/mL para el agua, ≤1 EU/mL para la mayoría de los reactivos de grado cultivo celular y ≤10 EU/mL como estándar general del sector para el suero fetal bovino, con grados de baja endotoxina a ≤1 EU/mL y grados de endotoxina ultrabaja por debajo de 0.1 EU/mL. La endotoxina sobrevive al autoclave y atraviesa los filtros de 0.2 µm, de modo que hay que excluirla en el origen en lugar de intentar eliminarla después.
  • DMEM (medio de Eagle modificado por Dulbecco) El DMEM (medio de Eagle modificado por Dulbecco) es un medio de cultivo celular basal derivado del medio esencial mínimo de Eagle, obtenido al multiplicar aproximadamente por cuatro las concentraciones de aminoácidos y vitaminas. Se suministra en versiones de glucosa alta (4500 mg/L, 25 mM) y glucosa baja (1000 mg/L, 5.6 mM), tamponado con 3700 mg/L de bicarbonato de sodio, y necesita suero o un suplemento definido más una atmósfera de CO2 para mantener el pH fisiológico. El DMEM es el medio por defecto para líneas adherentes como HEK293, HeLa, NIH/3T3, Vero y los cultivos adherentes derivados de CHO, así como para la mayoría de los fibroblastos primarios.
  • Contaminación en el cultivo celular La contaminación del cultivo celular se agrupa en seis categorías: bacterias, levaduras, hongos filamentosos y mohos, micoplasma, virus y contaminación cruzada con otra línea celular. Las bacterias, las levaduras y los hongos se manifiestan en un plazo de uno a cinco días mediante turbidez, un cambio de pH o partículas visibles al microscopio, y se resuelven descartando el cultivo y localizando el fallo de técnica que permitió su entrada. El micoplasma, la contaminación viral y la identificación errónea de la línea celular no producen ningún cambio visible y solo se detectan mediante ensayos: PCR o tinción de ADN para el micoplasma, y perfil de STR para la identidad. La respuesta correcta ante cualquier contaminación biológica confirmada es descartar el cultivo afectado, descontaminar el incubador y reiniciar a partir de un vial congelado limpio.
  • El rojo de fenol en los medios de cultivo celular El rojo de fenol (fenolsulfonftaleína) es un indicador de pH que se añade a los medios de cultivo celular a razón de unos 5-15 mg/L; vira a amarillo por debajo de aproximadamente pH 6,8 y a rosa o fucsia por encima de aproximadamente pH 8,2, mientras que el rojo anaranjado normal de un medio sano se sitúa cerca de pH 7,4. Que el medio se vuelva amarillo significa acidificación —casi siempre por el lactato del metabolismo celular, por un cultivo sobrecrecido o por contaminación bacteriana—, mientras que un viraje a rosa o púrpura significa que el medio se ha alcalinizado, casi siempre porque el CO2 ha escapado del tampón de bicarbonato. El rojo de fenol no ejerce ninguna acción tamponante y es puramente diagnóstico; utilice medio sin rojo de fenol para los ensayos de fluorescencia y absorbancia, y para el trabajo con células sensibles a los estrógenos, donde el colorante interfiere en la lectura.

Fuentes

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