Referencia

Inactivación por calor del suero fetal bovino (FBS)

En resumen

La inactivación por calor del suero fetal bovino es una incubación controlada de 30 minutos a 56 grados C que destruye las proteínas termolábiles de la cascada del complemento antes de añadir el suero al medio de cultivo. El suero se descongela, se atempera a 37 grados C, se traslada a un baño a 56 grados C, se mantiene exactamente 30 minutos contados desde el momento en que el propio suero alcanza la temperatura, con agitación suave cada 5-10 minutos, y después se enfría de inmediato y se reparte en alícuotas. Para el cultivo rutinario de líneas celulares establecidas suele ser innecesaria, porque la actividad del complemento en el suero fetal es baja y el calentamiento degrada además factores de crecimiento lábiles; sigue siendo práctica habitual en los ensayos inmunológicos y con células sensibles al complemento.

Qué elimina la inactivación por calor

El complemento es una cascada de unas treinta proteínas plasmáticas que forma parte de la inmunidad innata. Cuando se activa — clásicamente por un anticuerpo unido a la superficie de una célula — la cascada avanza a través de C1, C4, C2 y C3 hasta ensamblar el complejo de ataque a la membrana, que perfora poros en la membrana diana y la lisa. Varios de los componentes iniciales, en particular C1q y C2, son termolábiles y pierden actividad en cuestión de minutos a 56 grados C. Esa es toda la base bioquímica de la práctica.

En cultivo celular, la preocupación es que el complemento residual del suero pueda lisar las células cultivadas, interferir en los ensayos basados en anticuerpos o activar las células inmunitarias que se están estudiando. En un ensayo que mide la citotoxicidad dependiente del complemento, el complemento aportado por el suplemento sérico es un factor de confusión directo, y eliminarlo no es opcional.

Hay dos cosas que la inactivación por calor no hace, y que con frecuencia se suponen erróneamente:

  • No es un paso de esterilización. Treinta minutos a 56 grados C no inactivan de forma fiable los virus, y no eliminan el micoplasma. El suero se vuelve seguro mediante la esterilización por filtración a 0.1 micras durante la fabricación y, cuando se requiere, mediante irradiación gamma — no gracias al baño de agua del usuario.
  • No reduce la variabilidad entre lotes. El suero inactivado por calor arrastra la misma variación entre lotes que el material sin tratar, y el calentamiento puede amplificarla, porque los componentes sensibles al calor no están presentes en la misma proporción en todos los lotes.

Protocolo: inactivar el FBS por calor a 56 grados C durante 30 minutos

El modo de fallo de este procedimiento es térmico: demasiado calor o demasiado tiempo destruye los componentes del suero; poco calor o poco tiempo deja el complemento intacto. Todo lo que sigue existe para controlar la temperatura con precisión.

  1. Descongele el suero despacio. Pase el frasco de -20 grados C a 2-8 grados C y déjelo toda la noche; después atempérelo a temperatura ambiente. No descongele un frasco entero directamente a 37 grados C ni en un microondas: el sobrecalentamiento local desnaturaliza proteína y produce un precipitado floculento que después se atribuye al paso de inactivación.
  2. Mezcle. Invierta el frasco varias veces una vez descongelado por completo. El suero sedimenta durante el almacenamiento y un frasco sin mezclar se calienta de forma desigual.
  3. Atempere a 37 grados C. Coloque el frasco en un baño a 37 grados C hasta que el contenido alcance esa temperatura. Así se acorta el tiempo de subida hasta 56 grados C, que es la parte del ciclo que no puede controlar con precisión.
  4. Prepare el baño a 56 grados C. Use un termómetro calibrado y verifique el baño a 56 grados C, idealmente dentro de más menos 0.5 grados C. Muchos baños de agua se desvían 1-2 grados C. Llene el baño de modo que el nivel del agua quede por encima del nivel del suero en el frasco, y no deje nunca que el frasco descanse sobre la resistencia.
  5. Prepare un control de temperatura. Ponga en el baño, junto al suero, un frasco idéntico con el mismo volumen de agua y un termómetro dentro. Es la única forma fiable de saber cuándo ha alcanzado los 56 grados C el propio suero, y no solo el baño.
  6. Empiece a cronometrar cuando el control llegue a 56 grados C, no cuando entra el frasco. Un frasco de 500 mL tarda bastante en equilibrarse. Mantenga exactamente 30 minutos.
  7. Agite suavemente cada 5-10 minutos. El suero es viscoso y establece gradientes térmicos; la agitación mantiene todo el volumen a temperatura y evita una capa sobrecalentada contra el vidrio. Agite con movimiento circular, no sacuda: la espuma desnaturaliza la proteína en la interfase con el aire.
  8. Enfríe de inmediato. Traslade el frasco a un baño de hielo o a 2-8 grados C en cuanto se cumplan los 30 minutos. Dejarlo enfriar despacio en la mesa añade una dosis extra de calor no controlada.
  9. Reparta en recipientes estériles en volúmenes de un solo uso, trabajando en condiciones asépticas en una cabina de seguridad biológica. Dividir un frasco de 500 mL en alícuotas de 50 mL evita los ciclos repetidos de congelación y descongelación y evita la tentación de recalentar un frasco a medio usar.
  10. Consérvelo a -20 grados C, protegido de la luz. Etiquételo con claridad como inactivado por calor, con la fecha. No inactive nunca dos veces por calor: un segundo ciclo duplica aproximadamente el daño térmico sin ningún beneficio adicional.

Nota sobre el escalado: si trata varios frascos, no sature el baño. Cada frasco adicional ralentiza la recuperación del conjunto del baño hasta 56 grados C y alarga la fase de subida no controlada.

Por qué 56 grados C durante 30 minutos

La cifra es empírica e histórica. Procede de la serología clásica, donde se estableció que 56 grados C durante 30 minutos bastaban para abolir la actividad hemolítica del complemento en sueros humanos y animales dejando las inmunoglobulinas prácticamente intactas. Cuando el cultivo de células de mamífero adoptó la suplementación con suero, heredó esa convención serológica sin más.

La convención no se estableció mediante un ensayo comparativo en cultivo celular, y nunca se ha optimizado con ese fin. Es un umbral que destruye el complemento de forma fiable, no un ajuste que se haya demostrado óptimo para las células en cultivo. Esa distinción importa, porque esos mismos 30 minutos a 56 grados C actúan también sobre todo lo demás que hay en el suero.

Cuándo es realmente necesaria la inactivación por calor

Existe un conjunto real, aunque estrecho, de aplicaciones en las que el complemento del suplemento sérico es un interferente activo y debe eliminarse:

  • Ensayos de citotoxicidad dependiente del complemento (CDC). Toda la lectura es la lisis mediada por complemento, aportado deliberadamente desde una fuente definida. Cualquier complemento que llegue con el suplemento sérico corrompe la línea basal.
  • Ensayos inmunológicos y cultivo de células inmunitarias. Ensayos de proliferación y activación de linfocitos, reacciones linfocitarias mixtas y, en general, el cultivo primario de células inmunitarias, donde los componentes del complemento pueden activar o lisar las células en estudio.
  • Cultivo de hibridomas y trabajo con anticuerpos monoclonales. Es práctica habitual de laboratorio, tanto por el origen inmunitario de las células como porque el complemento puede interferir en las lecturas posteriores basadas en anticuerpos.
  • Tipos celulares primarios y diferenciados sensibles al complemento. Una minoría de líneas sí crece mejor con suero inactivado por calor. Coriell describe que, tras pasar a suero estándar, observó que un pequeño subconjunto de líneas diferenciadas rendía mejor con material inactivado por calor, aunque esto era poco frecuente.
  • Trabajo de neutralización vírica en el que el complemento pueda contribuir a la neutralización o a la lisis de células infectadas, y falsear un título.

Si su protocolo entra en una de estas categorías, inactive por calor — o compre suero preinactivado, que se fabrica con un control de temperatura mejor del que alcanza un baño de agua de laboratorio.

Cuándo es innecesaria: qué dicen los datos

Para el mantenimiento rutinario de líneas celulares establecidas, los datos no respaldan la inactivación por calor como opción por defecto.

La actividad del complemento en el suero fetal bovino ya es baja de partida. Triglia y Linscott encontraron que los niveles de los componentes del complemento en FBS comercial eran una fracción de los del bovino adulto, y que en diez muestras comerciales de FBS no se detectaba hemólisis ni siquiera en suero sin diluir. Los terneros fetales no han acumulado la exposición inmunitaria que genera un título de complemento adulto, y el suero se empobrece aún más durante el procesado y la filtración.

La vía del complemento necesita además anticuerpos para arrancar. La vía clásica se dispara por complejos antígeno-anticuerpo. En un cultivo estándar de una línea establecida en suero bovino, ese disparador está en gran medida ausente.

La manipulación habitual ya inactiva buena parte de lo que queda. El suero se descongela y se atempera de forma rutinaria a 37 grados C antes de usarlo, y los componentes iniciales del complemento son lo bastante lábiles como para que solo esa manipulación reduzca sustancialmente la actividad.

La experiencia directa a gran escala coincide. Coriell pasó de suero fetal bovino inactivado por calor a suero estándar en sus colecciones y comunicó que la inactivación por calor no es necesaria para la mayoría de las líneas celulares. Las líneas robustas de trabajo — HEK293, CHO, NIH/3T3 y líneas de fibroblastos comparables — no muestran ningún beneficio.

El resumen honesto es que la inactivación por calor es un paso heredado en la mayoría de los protocolos. Persiste porque está escrita en los procedimientos normalizados de trabajo del laboratorio, porque resulta cómodo mantener un solo inventario de suero y porque nadie quiere ser quien cambió una variable en un sistema de cultivo que funciona.

Qué cuesta la inactivación por calor

Treinta minutos a 56 grados C no son una operación selectiva. Eliminan el complemento y actúan también sobre el resto del proteoma del suero.

Pérdida de factores de crecimiento lábiles. El suero sostiene el crecimiento gracias a una mezcla mal definida de factores de crecimiento, hormonas, factores de adhesión y proteínas transportadoras, algunos de ellos sensibles al calor. Una temperatura demasiado alta o una exposición demasiado larga destruye parte de ellos, que es precisamente el motivo de que las tolerancias del protocolo sean estrechas. La consecuencia práctica suele verse como una menor eficiencia de siembra y una menor eficiencia de clonación, más que como un cambio en la velocidad global de crecimiento: las células a baja densidad son las que más dependen de los componentes lábiles.

Proteoma sérico alterado. El calentamiento desnaturaliza y agrega una fracción de la proteína sérica. Para el trabajo proteómico y metabolómico esto es un problema directo: los perfiles analíticos de células cultivadas en suero inactivado por calor difieren de los de células cultivadas en suero sin tratar, y la diferencia es un artefacto del suplemento.

Interferencia en el trabajo con vesículas extracelulares. Se ha demostrado que el tratamiento térmico altera los perfiles proteicos de las células productoras de vesículas extracelulares, lo que convierte al suero inactivado por calor en una mala elección para los estudios de aislamiento y caracterización de vesículas extracelulares. Este trabajo requiere en general suero libre de vesículas extracelulares, obtenido por ultracentrifugación o filtración de flujo tangencial, que es un producto distinto del suero inactivado por calor.

Precipitado y turbidez. La agregación proteica durante el calentamiento produce material floculento o una turbidez general. No es contaminación, pero enturbia el medio, puede confundirse con una contaminación y añade partículas que acaban sobre la superficie de cultivo. Descongelar en exceso antes del proceso y sobrecalentar durante él empeoran ambos el resultado.

Tiempo y coste. El procedimiento ocupa un baño de agua y a un operador durante casi una hora por lote, y es una manipulación aséptica manual de un reactivo caro, con el riesgo de contaminación que eso implica.

Modos de fallo y resolución de problemas

Precipitado abundante o una capa gelatinosa después de la inactivación. El suero se sobrecalentó: o el baño se pasó de temperatura, o el frasco descansaba sobre la resistencia, o el cronómetro se puso en marcha antes de que el suero alcanzara la temperatura y en la práctica se mantuvo más de 30 minutos. El precipitado fino puede retirarse filtrando por 0.22 micras, aunque eso cuesta algo de proteína. La prevención consiste en un baño calibrado, un frasco de control lleno de agua y un nivel de agua suficiente.

El suero rinde peor que el lote sin tratar al que sustituye. Sospeche una sobredosis térmica. Compare la eficiencia de siembra y la eficiencia de clonación, no solo la confluencia a las 72 horas: esos son los criterios más sensibles a la pérdida de factores lábiles.

Todavía se detecta actividad del complemento. El suero nunca llegó a 56 grados C. Es el resultado típico de arrancar el cronómetro cuando el frasco entra en el baño en lugar de cuando el contenido alcanza la temperatura, y es frecuente con frascos de 500 mL.

Espuma y proteína desnaturalizada en la superficie. El frasco se sacudió en lugar de agitarse con movimiento circular. Las proteínas séricas se desnaturalizan con facilidad en la interfase aire-líquido.

Medio turbio tras la suplementación. Suele ser precipitado arrastrado. Mire el frasco de suero al trasluz antes de usarlo; fíltrelo si es necesario.

Inconsistencia entre lotes según el operador. Cargas distintas del baño, tamaños de frasco distintos y convenciones de cronometraje distintas producen productos genuinamente distintos. Si un laboratorio va a inactivar por calor, el procedimiento necesita un procedimiento normalizado de trabajo escrito que especifique el frasco de control y la regla de inicio del cronómetro; de lo contrario, "inactivado por calor" no es un tratamiento definido.

Comparación entre inactivación por calor, irradiación gamma y esterilización por filtración

Estos tres tratamientos se confunden a menudo en las decisiones de compra, y hacen trabajos completamente distintos.

La esterilización por filtración a través de una secuencia de membranas que termina en 0.1 micras es el paso de fabricación que hace al suero microbiológicamente seguro para el cultivo. Elimina bacterias y hongos, y la filtración a 0.1 micras reduce sustancialmente el micoplasma. No es opcional y no es algo que realice el usuario.

La irradiación gamma es un paso de reducción vírica que aplica el fabricante al suero congelado a una dosis validada. Va dirigido a los agentes víricos adventicios que la filtración no puede eliminar. Se emplea cuando la aplicación posterior es biofarmacéutica o cuando la exigencia regulatoria requiere una reducción vírica documentada. La irradiación tiene su propio pequeño coste en rendimiento del suero.

La inactivación por calor no es ninguna de las dos cosas. Es un tratamiento funcional dirigido a una clase de proteínas, realizado por el usuario o suministrado ya tratado, y no aporta nada apreciable a la seguridad microbiológica ni vírica.

El corolario es que la mención "inactivado por calor" en una etiqueta responde a una pregunta sobre el complemento, y no responde nada sobre la esterilidad. Si la preocupación son los agentes adventicios, lo que hay que mirar en la especificación es el tren de filtración, el estado de irradiación gamma y la documentación de país de origen y trazabilidad — no el tratamiento térmico.

Suero fetal bovino inactivado por calor frente a suero sin tratar, según la aplicación. "No necesario" significa que el complemento no es un interferente plausible y que el coste térmico supera cualquier beneficio; ensáyelo en su propio sistema antes de cambiar un protocolo establecido.
Aplicación¿Suero inactivado por calor?Motivo
Mantenimiento rutinario de líneas continuas (HeLa, CHO, HEK293, NIH/3T3, Vero)No necesarioLa actividad del complemento en el FBS es baja, la vía clásica carece de su disparador de anticuerpos y el atemperado rutinario a 37 C ya reduce lo que hay presente
Ensayos de citotoxicidad dependiente del complemento (CDC)NecesarioEl complemento aportado por el suplemento sérico es la variable medida y no debe proceder de una fuente no controlada
Cultivo de linfocitos primarios, PBMC y células inmunitarias; ensayos de proliferación y activaciónRecomendadoLos componentes del complemento pueden activar o lisar las células inmunitarias en estudio
Cultivo de hibridomas y producción de anticuerpos monoclonalesDe uso habitualCélulas de origen inmunitario, y el complemento puede interferir en las lecturas posteriores basadas en anticuerpos
Ensayos de neutralización y titulación víricasSegún el casoNecesario cuando el complemento pueda contribuir a la neutralización o lisar células infectadas; en caso contrario, no
Aislamiento clonal, formación de colonias y siembra a baja densidadEvitarEstos criterios dependen sobre todo de factores de crecimiento y adhesión termolábiles, así que el daño térmico aparece aquí primero
Aislamiento y caracterización de vesículas extracelularesEvitarEl tratamiento térmico altera los perfiles proteicos de las células productoras de vesículas; use en su lugar suero libre de vesículas extracelulares, que es un producto distinto
Proteómica y metabolómica en células cultivadasEvitarEl calentamiento altera el proteoma del suero e introduce agregados que sesgan los perfiles analíticos
Cultivo de células de insecto (Sf9, Sf21) en medio suplementado con sueroNo necesarioNo hay ninguna vía del complemento de mamífero relevante para el sistema
Flujos de trabajo sin suero, químicamente definidos y libres de origen animalNo aplicableNo hay suero presente; el complemento está ausente por diseño

Preguntas frecuentes

¿Qué temperatura y qué tiempo se usan para inactivar el FBS por calor?

56 grados C durante 30 minutos. Los 30 minutos se cuentan desde el momento en que el propio suero alcanza los 56 grados C, y no desde que el frasco entra en el baño de agua, razón por la cual se coloca junto a él un frasco de control lleno de agua con un termómetro.

¿Por qué el suero se inactiva por calor precisamente a 56 grados C?

Los componentes iniciales del complemento, en especial C1q y C2, pierden actividad en cuestión de minutos a 56 grados C, mientras que las inmunoglobulinas se conservan en gran medida. La cifra se estableció en la serología clásica y pasó al cultivo celular sin cambios; nunca se optimizó para células en cultivo.

¿Es necesaria la inactivación por calor del FBS?

Para la mayoría de las líneas celulares establecidas, no. Los niveles de complemento en el suero fetal bovino son una fracción de los del adulto, y Triglia y Linscott no encontraron hemólisis detectable en diez muestras comerciales de FBS ni siquiera sin diluir. Coriell comunicó tras el cambio que la inactivación por calor no es necesaria para la mayoría de las líneas celulares. Sigue siendo necesaria para los ensayos dependientes del complemento y el trabajo con células inmunitarias.

¿Cuál es la diferencia entre el FBS inactivado por calor y el FBS normal?

Solo el tratamiento térmico de 30 minutos a 56 grados C. El suero inactivado por calor ha perdido la actividad del complemento y algunos factores de crecimiento termolábiles, y puede arrastrar un precipitado fino procedente de la agregación proteica. Ambos productos son igual de estériles, porque la esterilidad procede de la filtración a 0.1 micras del fabricante y no del calentamiento.

¿La inactivación por calor mata los virus o el micoplasma del suero?

No. Treinta minutos a 56 grados C no son un paso validado de inactivación vírica y no eliminan el micoplasma. La seguridad microbiológica procede de la esterilización por filtración a 0.1 micras durante la fabricación, y la reducción del riesgo vírico de la irradiación gamma cuando esta se especifica.

¿Puedo inactivar el suero por calor dos veces?

No. Un segundo ciclo duplica aproximadamente el daño térmico a los componentes lábiles del suero y no aporta ningún beneficio adicional, porque el complemento ya quedó destruido la primera vez. No reinactive nunca un frasco ya etiquetado como inactivado por calor.

¿Por qué mi suero se enturbió o formó precipitado tras la inactivación por calor?

Por agregación proteica debida al sobrecalentamiento. Las causas frecuentes son un baño que superó los 56 grados C, un frasco apoyado en la resistencia, una descongelación demasiado agresiva antes del proceso o un cronometraje que en la práctica mantuvo el suero por encima de la temperatura durante más de 30 minutos. El precipitado fino puede retirarse por filtración a 0.22 micras, con cierto coste en proteína.

¿Debo inactivar el suero por calor para cultivo de células madre o cultivo primario?

No por defecto. Estos cultivos son los más sensibles a la pérdida de factores de crecimiento y adhesión termolábiles, de modo que el cribado de lotes y un suero cualificado importan mucho más que el tratamiento térmico. Inactive por calor solo si se ha demostrado que el protocolo concreto o el tipo celular concreto lo requiere.

¿Necesito suero inactivado por calor para el cultivo de células de insecto?

No. Los sistemas Sf9 y Sf21 no tienen ninguna vía del complemento de mamífero con la que interferir, así que la razón del tratamiento no se aplica. Además, la mayor parte del trabajo con células de insecto usa hoy medios sin suero.

¿Es mejor comprar FBS preinactivado o inactivarlo por calor en el laboratorio?

Si realmente lo necesita, comprar suero preinactivado suele estar mejor controlado. Los fabricantes emplean procesos térmicos validados y monitorizados; un baño de agua de laboratorio puede desviarse 1-2 grados C y el tiempo de subida de un frasco de 500 mL es difícil de controlar. El tratamiento interno tiene sentido sobre todo cuando ya dispone de un lote cualificado de suero sin tratar y quiere inactivar una parte.

¿La inactivación por calor reduce la variabilidad entre lotes del suero?

No, y puede empeorarla. El suero inactivado por calor está sujeto a la misma variación entre lotes que el suero sin tratar, y el calentamiento degrada los componentes sensibles al calor en distinta medida en distintos lotes. El cribado de lotes frente a sus propias células y criterios de valoración es el único control de la variabilidad.

¿Cómo debe almacenarse el suero inactivado por calor?

Repartido en alícuotas en recipientes estériles de un solo uso y congelado a -20 grados C, protegido de la luz. Las alícuotas de un solo uso evitan los ciclos repetidos de congelación y descongelación, que dañan el suero por sí mismos, y eliminan cualquier tentación de recalentar un frasco a medio usar.

Productos para esta aplicación

Páginas de referencia relacionadas

  • Suero bovino en cultivo celular El suero bovino es la fracción líquida de la sangre coagulada de ganado vacuno y se añade al medio de cultivo al 5-10% para aportar los factores de crecimiento, hormonas, proteínas de transporte y de adhesión, lípidos y elementos traza que los medios basales no contienen. El suero fetal bovino (FBS) y el suero fetal de ternera (FCS) son dos nombres del mismo producto, obtenido del feto en el sacrificio de vacas gestantes; el suero de ternera recién nacida procede de terneros de menos de unos 20 días y el suero bovino de donante de rebaños de donantes controlados de entre 12 y 36 meses, y ambos contienen más inmunoglobulinas y menos factores de crecimiento que el FBS. Como el suero es un material biológico indefinido, con una variación sustancial entre lotes, cuestiones de bienestar animal sin resolver y una cadena de suministro inestable, los medios definidos sin suero y libres de origen animal se prefieren cada vez más siempre que la línea celular los tolere.
  • Medio químicamente definido Un medio químicamente definido es un medio de cultivo celular en el que se conocen la identidad y la concentración de todos sus componentes: sin suero, sin hidrolizados de proteínas y sin extractos indefinidos. Puede contener proteínas, siempre que sean recombinantes y de secuencia y concentración conocidas; por eso «químicamente definido» y «sin proteínas» son categorías distintas y no sinónimos. Los medios químicamente definidos eliminan la variabilidad entre lotes, el riesgo de agentes adventicios y la carga regulatoria asociados al suero, y son el estándar en la producción biofarmacéutica con sistemas CHO, HEK293 e hibridomas.
  • Subcultivo celular (pase) El subcultivo celular, también llamado pase, es el traspaso de las células de un cultivo que se aproxima a la confluencia a recipientes nuevos con medio fresco para que el crecimiento pueda continuar. Las células adherentes se despegan primero, normalmente con Trypsin-EDTA al 0.25% o al 0.05% o con un reactivo de disociación no enzimático, y se vuelven a sembrar a una densidad menor fijada por una proporción de división como 1:4; las células en suspensión simplemente se diluyen en medio fresco sin ningún paso de disociación. La mayoría de las líneas celulares adherentes continuas se subcultivan al 70-80% de confluencia, lo que suele significar dos o tres pases por semana.
  • Medio de congelación celular y protocolos de criopreservación El medio de congelación celular es una disolución con crioprotector que permite a las células sobrevivir a la congelación y al almacenamiento prolongado; lo más habitual es prepararlo con un medio basal o suero más un 5-10 % de dimetilsulfóxido (DMSO), siendo el 10 % el punto de partida estándar. El DMSO penetra en la célula y modifica la forma en que se congela el agua, evitando los cristales de hielo intracelulares que de otro modo romperían las membranas durante el enfriamiento. Las células se congelan a una velocidad controlada de aproximadamente 1 C por minuto hasta -80 C y después se trasladan a la fase de vapor del nitrógeno líquido, ya que el almacenamiento prolongado exige temperaturas por debajo de unos -135 C para impedir la recristalización del hielo. La descongelación es lo contrario: lo más rápida posible en un baño de agua a 37 C, seguida de una dilución inmediata para eliminar el DMSO, que resulta tóxico para las células por encima de las temperaturas de congelación.
  • DMEM (medio de Eagle modificado por Dulbecco) El DMEM (medio de Eagle modificado por Dulbecco) es un medio de cultivo celular basal derivado del medio esencial mínimo de Eagle, obtenido al multiplicar aproximadamente por cuatro las concentraciones de aminoácidos y vitaminas. Se suministra en versiones de glucosa alta (4500 mg/L, 25 mM) y glucosa baja (1000 mg/L, 5.6 mM), tamponado con 3700 mg/L de bicarbonato de sodio, y necesita suero o un suplemento definido más una atmósfera de CO2 para mantener el pH fisiológico. El DMEM es el medio por defecto para líneas adherentes como HEK293, HeLa, NIH/3T3, Vero y los cultivos adherentes derivados de CHO, así como para la mayoría de los fibroblastos primarios.
  • Medio RPMI 1640 El RPMI 1640 es un medio de cultivo celular basal desarrollado en el Roswell Park Memorial Institute en 1966 para el cultivo de leucocitos humanos en suspensión. Contiene 2000 mg/L de glucosa (11.1 mM), 2000 mg/L de bicarbonato de sodio (23.8 mM) tamponados para una atmósfera de 5% CO2, una concentración de fosfato inusualmente alta (unos 5.6 mM), poco calcio (unos 0.42 mM) y un conjunto de componentes característico que incluye glutatión reducido, biotina, vitamina B12, ácido paraaminobenzoico e hidroxiprolina. Es el medio estándar para linfocitos, hibridomas y la mayoría de las líneas hematopoyéticas y linfoides adaptadas a suspensión, y normalmente se suplementa con un 10% de suero fetal bovino.
  • Albúmina humana recombinante en cultivo celular La albúmina sérica humana recombinante (rHSA) es una proteína no glucosilada de 585 aminoácidos y 66,5 kDa producida en levaduras como *Pichia pastoris* o en arroz transgénico, en lugar de purificarse a partir de plasma humano, y se emplea como suplemento libre de origen animal en medios de cultivo sin suero y químicamente definidos. En cultivo actúa como transportador de ácidos grasos, lípidos, hormonas y oligoelementos, como antioxidante gracias al tiol libre de su cisteína-34, como secuestrante de metales tóxicos y del exceso de ácidos grasos libres, y como proteína tensioactiva que protege frente a la cizalla en cultivos agitados y con burbujeo. Las concentraciones de trabajo habituales son de 0,1-10 g/L, con mayor frecuencia de 0,5-5 g/L, y se suministra normalmente como disolución de 200 mg/mL (20 %). Su rendimiento depende en gran medida de lo que lleve unido, de modo que las preparaciones cargadas de ácidos grasos y las libres de ácidos grasos se comportan de forma bastante distinta.
  • Penicilina-estreptomicina y antibiótico-antimicótico en cultivo celular La penicilina-estreptomicina, abreviada universalmente como Pen-Strep, se suministra como solución estéril 100X con 10000 unidades/mL de penicilina G y 10000 ug/mL de estreptomicina, y se diluye 1:100 en el medio para obtener una concentración de trabajo de 100 U/mL de penicilina y 100 ug/mL de estreptomicina. La penicilina bloquea la síntesis de la pared bacteriana y cubre sobre todo organismos grampositivos; la estreptomicina se une a la subunidad ribosómica 30S bacteriana y cubre sobre todo gramnegativos, de modo que la pareja ofrece una cobertura antibacteriana amplia. El antibiótico-antimicótico (anti-anti) es la misma combinación más 25 ug/mL de anfotericina B a 100X, lo que da 0.25 ug/mL en uso para cubrir hongos. Ninguno de los dos controla el micoplasma, y los grandes bancos celulares, incluido ATCC, desaconsejan el uso rutinario de antibióticos porque enmascara la contaminación de bajo nivel en lugar de prevenirla.
  • El rojo de fenol en los medios de cultivo celular El rojo de fenol (fenolsulfonftaleína) es un indicador de pH que se añade a los medios de cultivo celular a razón de unos 5-15 mg/L; vira a amarillo por debajo de aproximadamente pH 6,8 y a rosa o fucsia por encima de aproximadamente pH 8,2, mientras que el rojo anaranjado normal de un medio sano se sitúa cerca de pH 7,4. Que el medio se vuelva amarillo significa acidificación —casi siempre por el lactato del metabolismo celular, por un cultivo sobrecrecido o por contaminación bacteriana—, mientras que un viraje a rosa o púrpura significa que el medio se ha alcalinizado, casi siempre porque el CO2 ha escapado del tampón de bicarbonato. El rojo de fenol no ejerce ninguna acción tamponante y es puramente diagnóstico; utilice medio sin rojo de fenol para los ensayos de fluorescencia y absorbancia, y para el trabajo con células sensibles a los estrógenos, donde el colorante interfiere en la lectura.
  • Trypsin-EDTA El Trypsin-EDTA es un reactivo de disociación celular que combina la tripsina, una serina proteasa que corta enlaces peptídicos por el lado C-terminal de los residuos de lisina y arginina en las proteínas de superficie y de la matriz, con el quelante EDTA, que fija los iones calcio y magnesio que necesitan las moléculas de adhesión celular. Se suministra en una solución salina equilibrada sin calcio ni magnesio, lo más habitual al 0.05% de tripsina (0.5 g/L) para líneas celulares de rutina y al 0.25% (2.5 g/L) para células firmemente adheridas y cultivos primarios. El uso típico son 2-5 minutos a 37 °C, seguidos de inmediato por la neutralización con medio con suero o con un inhibidor de tripsina definido.

Fuentes

¿Tiene dudas sobre su aplicación concreta? Nuestro equipo técnico responde en un día laborable — [email protected]