Referencia

EMEM frente a DMEM: qué cambió realmente la modificación

En resumen

El EMEM (medio mínimo esencial de Eagle, vendido también como MEM) y el DMEM (medio de Eagle modificado por Dulbecco) son el mismo medio con una generación de diferencia: el DMEM es la formulación de Eagle enriquecida, con aproximadamente cuatro veces más vitaminas, alrededor del doble de la mayoría de los aminoácidos, el doble de glutamina, glicina y serina añadidas, nitrato férrico y 3.7 g/L de bicarbonato de sodio frente a los 1.5-2.2 g/L del EMEM. La consecuencia práctica es que el DMEM sostiene líneas de crecimiento rápido y alta demanda metabólica, como HEK293 y NIH/3T3, mientras que el EMEM se adapta mejor a células adherentes más lentas y menos exigentes y a líneas primarias; y como el bicarbonato más alto del DMEM está formulado para un 10% de CO2 y el del EMEM para un 5%, ambos medios no son intercambiables sin comprobar antes el incubador.

Lo primero: EMEM y MEM son el mismo medio

Buena parte de la confusión que hay detrás de esta pregunta es de nomenclatura, no de química.

EMEM corresponde a Eagle's Minimum Essential Medium, el medio mínimo esencial de Eagle. MEM corresponde a Minimum Essential Medium, medio mínimo esencial. Ambos nombran la misma formulación: la que publicó Harry Eagle en 1959. ATCC etiqueta su versión como EMEM; Gibco, Sigma y la mayoría de los demás proveedores etiquetan la suya como MEM. Un protocolo que pide EMEM está pidiendo MEM, y al revés.

Lo que no es idéntico es el frasco. Los proveedores modifican la formulación base y las diferencias son reales:

  • El MEM de Gibco (11095) contiene sales de Earle con 2.2 g/L de bicarbonato de sodio, 1.0 g/L de glucosa y 2 mM de L-glutamina, sin aminoácidos no esenciales y sin piruvato de sodio.
  • El EMEM de ATCC (30-2003) contiene sales de Earle con solo 1500 mg/L de bicarbonato de sodio, y añade aminoácidos no esenciales, 2 mM de L-glutamina y 1 mM de piruvato de sodio. Su especificación es pH 7.0-7.4 y osmolalidad de 260-320 mOsm/kg.

Así que un EMEM de ATCC ya contiene los aminoácidos no esenciales que quien usa un MEM de Gibco tiene que añadir a partir de un suplemento 100X, y lleva un tercio menos de bicarbonato. Si cambia de proveedor y sus cultivos empiezan a comportarse de otra manera, este es el primer sitio donde mirar. Lea siempre la línea de la modificación en la etiqueta en lugar de fiarse de las cuatro letras.

El linaje: primero Eagle, después Dulbecco

Harry Eagle estableció el conjunto mínimo de nutrientes que las células de mamífero en cultivo no pueden fabricar por sí mismas. El Basal Medium Eagle llegó primero, en 1955; el medio mínimo esencial le siguió en 1959, con un complemento de aminoácidos revisado y algo más rico. La filosofía del diseño está en el propio nombre: el mínimo que funciona, no el máximo que ayuda.

Renato Dulbecco y Gordon Freeman modificaron el medio de Eagle en 1959 con un propósito concreto: hacer crecer fibroblastos de embrión de ratón para sostener ensayos de placa del virus del polioma. Esa aplicación necesitaba células creciendo a pleno rendimiento, así que la modificación enriqueció casi todo. El resultado fue el medio de Eagle modificado por Dulbecco.

Esta historia explica el carácter de los dos medios. El EMEM es austero y se diseñó como un mínimo definido. El DMEM es rico y se diseñó para forzar la proliferación. Ninguno es mejor: se construyeron con especificaciones distintas, y el correcto depende del comportamiento que necesiten sus células.

Qué cambió realmente Dulbecco

La afirmación habitual de que el DMEM tiene cuatro veces los aminoácidos del MEM es falsa, y acertar en esto importa si se está razonando sobre limitación de nutrientes. Comparando las formulaciones de Gibco componente a componente:

Vitaminas: cuatro veces más, casi exactamente. El cloruro de colina, el D-pantotenato de calcio, el ácido fólico, la niacinamida y el clorhidrato de tiamina pasan todos de 1 mg/L en el MEM a 4 mg/L en el DMEM. La riboflavina pasa de 0.1 a 0.4 mg/L, y el i-inositol de 2 a 7.2 mg/L. Hay además una sustitución, y no un aumento: el MEM usa clorhidrato de piridoxal y el DMEM, clorhidrato de piridoxina.

Aminoácidos: alrededor del doble, con excepciones. La leucina, la isoleucina, la lisina, la metionina, la fenilalanina, la treonina, la tirosina, la valina y la cistina están todas cerca de duplicarse: la leucina pasa de 52 a 105 mg/L y la metionina, de 15 a 30. Pero la arginina baja, de 126 mg/L en el MEM a 84 en el DMEM. La histidina es idéntica, 42 mg/L en ambos. El triptófano solo sube de 10 a 16 mg/L.

Glutamina: el doble, de 292 mg/L (2 mM) a 584 mg/L (4 mM).

Glicina y serina: añadidas. El MEM no contiene ninguna de las dos; el DMEM contiene ambas a 0.4 mM. Son los dos únicos aminoácidos no esenciales que lleva el DMEM: no incluye ninguno de los otros cinco del conjunto NEAA estándar.

Glucosa: igual o cuadruplicada, según la versión. El MEM contiene 1.0 g/L. El DMEM de baja glucosa contiene también 1.0 g/L; el DMEM de alta glucosa contiene 4.5 g/L (25 mM).

Bicarbonato de sodio: bastante más alto, de 2.2 g/L (26.2 mM) en el MEM de Gibco a 3.7 g/L (44.0 mM) en el DMEM. El cloruro de sodio baja en la misma medida, de 6.8 a 6.4 g/L, para mantener la osmolalidad dentro del intervalo.

Nitrato férrico añadido a 0.1 mg/L, una fuente de hierro de la que el MEM carece por completo.

Rojo de fenol más alto, de 10 a 15 mg/L, y por eso el DMEM simplemente se ve más rojo que el MEM al mismo pH.

Por lo demás, la base salina es común: ambos llevan cloruro de calcio a 1.8 mM, sulfato de magnesio a 0.81 mM y cloruro de potasio a 5.33 mM.

Sales de Earle, sales de Hanks y la cuestión del CO2

El MEM se vende sobre dos bases salinas distintas, y esto hace tropezar más a menudo que las diferencias en aminoácidos.

El MEM con sales de Earle es la versión estándar. Su componente salino es exactamente la solución salina equilibrada de Earle: 2.2 g/L de bicarbonato de sodio, 6.8 g/L de cloruro de sodio, 0.4 g/L de cloruro de potasio, 140 mg/L de fosfato de sodio monobásico y 1.0 g/L de glucosa, más calcio y magnesio. Está diseñado para un incubador de CO2, convencionalmente al 5%.

El MEM con sales de Hanks sustituye esa base por la HBSS, cuyo bicarbonato es de solo 0.35 g/L. Esa formulación está diseñada para mantener el pH en aire ambiente, en un recipiente cerrado y sin incubador de CO2.

El DMEM se fabrica únicamente sobre una base derivada de la de Earle, y modificada: más bicarbonato, algo menos de cloruro de sodio y de fosfato, y el nitrato férrico añadido. No existe un DMEM con sales de Hanks, porque 3.7 g/L de bicarbonato y el aire ambiente son incompatibles por diseño.

La regla que conecta todo esto es que el bicarbonato debe ajustarse a la atmósfera. Los proveedores indican aproximadamente: por debajo de 1.5 g/L para aire ambiente o 4% de CO2, de 1.5-2.2 g/L para el 5%, de 2.2-3.4 g/L para el 7% y por encima de 3.5 g/L para el 10%. El DMEM de Gibco, a 3.7 g/L, está formulado para un 10% de CO2. La mayoría de los laboratorios lo usan igualmente al 5% y funciona, pero entonces el medio está por encima del pH para el que fue diseñado, y por eso un frasco de DMEM puede verse rosado desde el día en que se abre. El EMEM de ATCC, a 1.5 g/L, está especificado explícitamente para un 5% de CO2 en aire, y ATCC señala que a mayor CO2 puede hacer falta más bicarbonato.

Si traslada una línea celular de EMEM a DMEM sin pensar en el incubador, solo el desplazamiento de pH puede explicar el cambio de crecimiento que observe.

Cuándo es correcto cada medio

Empiece por la recomendación del banco de células. ATCC, ECACC, DSMZ y JCRB publican cada uno un medio concreto para cada línea depositada, y esas recomendaciones reflejan las condiciones en las que se caracterizó la línea. Desviarse es legítimo, pero cambia la velocidad de crecimiento, la morfología y a menudo el fenotipo, y hace que sus datos sean más difíciles de comparar con el trabajo publicado sobre esa misma línea.

El EMEM/MEM encaja con células adherentes de crecimiento lento y demanda metabólica moderada: cepas de fibroblastos diploides como MRC-5 y WI-38, muchas células primarias, células Vero y buena parte de la virología clásica, donde el MEM ha sido durante décadas el medio estándar para la célula hospedadora. ATCC recomienda EMEM para un gran número de líneas adherentes, incluida HeLa. Su composición más austera es una ventaja cuando se quiere que las células crezcan de forma constante y no lo más deprisa posible, y cuando al ensayo le importa tener un fondo mínimo y definido.

El DMEM encaja con líneas de proliferación rápida y alta demanda metabólica: HEK293 y sus derivadas, NIH/3T3, COS, muchas líneas transformadas y transfectadas, y la mayor parte del trabajo de transfección transitoria y de producción de virus. La glutamina, las vitaminas y —en la versión de alta glucosa— el carbono adicionales son justo lo que consumen esas células.

El DMEM de alta o de baja glucosa es una decisión aparte. La alta glucosa (4.5 g/L) sostiene el crecimiento a alta densidad, la transfección y la producción de virus, y es el estándar para hibridomas. La baja glucosa (1.0 g/L) se prefiere para hepatocitos primarios, para células cuyo metabolismo se está estudiando y allí donde la acumulación de lactato y la acidificación rápida son un problema. Tenga en cuenta que el DMEM de baja glucosa sigue llevando 3.7 g/L de bicarbonato: bajar la glucosa no cambia la necesidad de CO2.

El MEM alfa merece conocerse como tercera opción. Es una modificación adicional del MEM que lleva más aminoácidos, incluido el conjunto de los no esenciales, vitaminas adicionales, piruvato de sodio y ácido lipoico, y se vende con o sin nucleósidos y desoxirribonucleósidos. Es la opción estándar para las células estromales mesenquimales y para buena parte del trabajo hematopoyético, y en riqueza está más cerca del DMEM que del MEM simple.

Cómo cambiar de uno a otro sin arruinar el cultivo

Sustituir EMEM por DMEM uno por uno es el error habitual, y las consecuencias son previsibles y no misteriosas.

Pasar de EMEM a DMEM de alta glucosa multiplica la glucosa por 4.5, la glutamina por dos y las vitaminas por cuatro, todo a la vez. Las células responden creciendo más deprisa y produciendo mucho más lactato, de modo que el medio se acidifica antes y hay que alimentarlo con más frecuencia. Las curvas de crecimiento, los tiempos de duplicación, las densidades de siembra y todos los calendarios derivados de ellos se desplazan. Si el incubador se queda al 5% de CO2, el bicarbonato más alto sitúa además el pH de partida por encima de donde estaba.

En sentido contrario, de DMEM a EMEM, las células que dependían de ese fondo más rico pueden ralentizarse o detenerse; y si el cambio es hacia un MEM de Gibco en lugar de un EMEM de ATCC, habrá retirado también, sin pretenderlo, los aminoácidos no esenciales y el piruvato.

Tres reglas hacen segura la transición. Adapte de forma gradual, a lo largo de dos o tres pases, usando mezclas intermedias en lugar de un cambio brusco único. No cambie nunca de medio en mitad de un experimento ni entre un experimento y su control. Y vuelva a establecer la curva de crecimiento después de adaptar, porque todos los números que vienen después —densidad de siembra, intervalo de alimentación, día de recogida— se derivaron del medio anterior.

Si pasa del MEM de un proveedor a una formulación sin aminoácidos no esenciales, vuelva a añadirlos a 1X a partir de un suplemento 100X, lo que aporta 0.1 mM de cada uno de los siete. Esa única adición explica buena parte de la diferencia aparente entre un EMEM de ATCC y un MEM simple.

EMEM/MEM y DMEM comparados. Los valores corresponden a las formulaciones líquidas 1X de Gibco para MEM (11095) y DMEM (11965 de alta glucosa, 11885 de baja glucosa). El EMEM de ATCC (30-2003) se indica aparte donde difiere, ya que es la versión que especifican muchas fichas técnicas de líneas celulares.
Componente o propiedadMEM / EMEM (Gibco 11095)EMEM de ATCC (30-2003)DMEM, baja glucosaDMEM, alta glucosa
También conocido comoEMEM, MEM de Eagle, MEMEMEMDMEM de baja glucosaDMEM de alta glucosa
Publicación originalEagle, 1959Eagle, 1959 (modificación de ATCC)Dulbecco y Freeman, 1959Dulbecco y Freeman, 1959
Número de aminoácidos13 (incluida la L-glutamina)13 más los aminoácidos no esenciales15 (incluida la L-glutamina)15 (incluida la L-glutamina)
Glicina y L-serinaNinguna de las dosAmbas presentes (a través de los NEAA)Ambas a 0.4 mMAmbas a 0.4 mM
L-glutamina292 mg/L (2 mM)2 mM584 mg/L (4 mM)584 mg/L (4 mM)
Clorhidrato de L-arginina126 mg/L126 mg/L84 mg/L84 mg/L
L-leucina (representativa)52 mg/L52 mg/L105 mg/L105 mg/L
Nivel de vitaminas1 mg/L en la mayoría (referencia)Igual que la referencia del MEM4 mg/L en la mayoría (4× el MEM)4 mg/L en la mayoría (4× el MEM)
Forma de la vitamina B6Clorhidrato de piridoxalClorhidrato de piridoxalClorhidrato de piridoxinaClorhidrato de piridoxina
Aminoácidos no esencialesNo incluidos: se añaden aparteIncluidosSolo glicina y serinaSolo glicina y serina
Piruvato de sodioNo incluido1 mMIncluido en el 11885Depende de la versión
D-glucosa1.0 g/L (5.6 mM)1.0 g/L (5.6 mM)1.0 g/L (5.6 mM)4.5 g/L (25 mM)
Bicarbonato de sodio2.2 g/L (26.2 mM)1.5 g/L3.7 g/L (44.0 mM)3.7 g/L (44.0 mM)
Atmósfera de CO2 prevista5-7%5%10% por diseño; muy usado al 5%10% por diseño; muy usado al 5%
Cloruro de sodio6.8 g/L (117.2 mM)Base de Earle6.4 g/L (110.3 mM)6.4 g/L (110.3 mM)
Nitrato férricoNingunoNinguno0.1 mg/L0.1 mg/L
Calcio / magnesio1.8 mM Ca2+, 0.81 mM Mg2+Base de Earle1.8 mM Ca2+, 0.81 mM Mg2+1.8 mM Ca2+, 0.81 mM Mg2+
Rojo de fenol10 mg/LPresente15 mg/L15 mg/L
Base salinaEBSS de Earle (también se vende con HBSS de Hanks)EBSS de EarleSolo de tipo Earle modificadoSolo de tipo Earle modificado
Uso habitualFibroblastos diploides, Vero, células primarias, virologíaLíneas adherentes depositadas en ATCC, incluida HeLaHepatocitos primarios, estudios metabólicos, menos lactatoHEK293, NIH/3T3, transfección, producción de virus, hibridomas

Preguntas frecuentes

¿Es el EMEM lo mismo que el MEM?

Sí: ambas siglas corresponden al medio mínimo esencial de Eagle y nombran la misma formulación de 1959. ATCC etiqueta su producto como EMEM, mientras que Gibco y la mayoría de los demás lo etiquetan como MEM. La salvedad es que cada proveedor modifica la base de forma distinta: el EMEM de ATCC incluye aminoácidos no esenciales y piruvato de sodio y lleva 1500 mg/L de bicarbonato, mientras que el MEM de Gibco no lleva ninguno de esos dos suplementos y contiene 2.2 g/L.

¿Cuál es la diferencia entre EMEM y DMEM?

El DMEM es el medio de Eagle enriquecido. Lleva aproximadamente cuatro veces más vitaminas, alrededor del doble de la mayoría de los aminoácidos, el doble de glutamina, además de glicina, serina y nitrato férrico, de los que el EMEM carece, y 3.7 g/L de bicarbonato de sodio frente a los 1.5-2.2 g/L del EMEM. El DMEM de alta glucosa lleva además 4.5 g/L de glucosa frente a los 1.0 g/L del EMEM.

¿De verdad tiene el DMEM cuatro veces los aminoácidos del MEM?

No: esa afirmación tan repetida mezcla dos cosas. Las vitaminas sí son cuatro veces más altas, casi exactamente. La mayoría de los aminoácidos están alrededor del doble de concentrados, y hay excepciones en ambos sentidos: la arginina es en realidad más baja en el DMEM (84 mg/L frente a 126), la histidina es idéntica, 42 mg/L, y el triptófano solo sube de 10 a 16 mg/L.

¿Puedo sustituir el EMEM por DMEM?

A menudo sí, pero no como un cambio silencioso uno por uno. La sustitución eleva de forma notable los niveles de glucosa, glutamina y vitaminas, de modo que las células crecen más deprisa, acidifican antes el medio y necesitan otro calendario de alimentación. Adapte a lo largo de dos o tres pases con mezclas intermedias, no cambie nunca en mitad de un experimento y vuelva a establecer después su curva de crecimiento.

¿Cuál es la diferencia entre las sales de Earle y las de Hanks?

El bicarbonato y, por tanto, la atmósfera para la que está diseñado el medio. La solución salina equilibrada de Earle lleva 2.2 g/L de bicarbonato de sodio y necesita un incubador de CO2; la de Hanks lleva 0.35 g/L y mantiene el pH en aire ambiente. El MEM se vende sobre ambas bases: la de Earle para incubadores de CO2 y la de Hanks para trabajar al aire.

¿Por qué el DMEM necesita un 10% de CO2?

Porque contiene 3.7 g/L de bicarbonato de sodio, y el tamponamiento con bicarbonato solo mantiene el pH deseado cuando el CO2 disuelto se corresponde con él. La guía general es un 5% de CO2 para 1.5-2.2 g/L de bicarbonato y un 10% por encima de 3.5 g/L. Muchos laboratorios usan el DMEM al 5% de todos modos, lo que deja el medio algo por encima del pH para el que fue diseñado: es viable, pero conviene saberlo cuando un frasco recién abierto se ve rosado.

¿Qué medio debo usar para mi línea celular?

El que especifique el banco de células para esa línea: ATCC, ECACC, DSMZ y JCRB publican cada uno un medio recomendado, y esas recomendaciones reflejan las condiciones en las que se caracterizó la línea. En términos generales, el EMEM encaja con células adherentes más lentas y con primarias, y el DMEM con líneas de crecimiento rápido como HEK293 y NIH/3T3, pero la ficha técnica manda sobre la generalización.

¿Contiene el EMEM aminoácidos no esenciales?

Depende del proveedor. El EMEM de ATCC los incluye; el MEM de Gibco no, y quien lo usa los añade a 1X a partir de un suplemento MEM NEAA 100X, lo que aporta 0.1 mM de cada uno de los siete. Esta única diferencia explica buena parte de la discrepancia aparente entre dos frascos etiquetados ambos como medio mínimo esencial de Eagle.

¿Cuál es la diferencia entre el DMEM de alta y de baja glucosa?

4.5 g/L frente a 1.0 g/L de D-glucosa, es decir, 25 mM frente a 5.6 mM. La alta glucosa sostiene el crecimiento a alta densidad, la transfección y la producción de virus, y es el estándar para hibridomas; la baja glucosa encaja con hepatocitos primarios, estudios metabólicos y cualquier situación en la que la acumulación rápida de lactato sea un problema. El bicarbonato es de 3.7 g/L en ambos, así que la necesidad de CO2 no cambia.

¿En qué se diferencia el MEM alfa del DMEM?

El MEM alfa es una modificación adicional del medio de Eagle que lleva más aminoácidos, incluido el conjunto de los no esenciales, vitaminas adicionales, piruvato de sodio y ácido lipoico, y se vende con o sin nucleósidos y desoxirribonucleósidos. Es más rico que el MEM simple y es la opción habitual para células estromales mesenquimales y para buena parte del trabajo hematopoyético, pero pertenece a un linaje distinto del DMEM y no es una versión de este.

¿Por qué el DMEM se ve más rojo que el MEM?

Porque contiene más indicador, no porque el pH sea distinto. El DMEM lleva 15 mg/L de rojo de fenol frente a los 10 mg/L del MEM. Es una buena razón para no comparar nunca el color entre dos medios diferentes, sino únicamente entre frascos de la misma formulación.

¿Contiene hierro el DMEM?

Sí, como nitrato férrico a 0.1 mg/L. El MEM no contiene hierro añadido en absoluto y depende del que aporte el suero. Es una de las diferencias menores en masa, pero muy real al avanzar hacia condiciones de suero reducido o sin suero, donde los elementos traza tiene que aportarlos el medio y no el suero.

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Páginas de referencia relacionadas

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  • MEM alfa (α-MEM) y medio esencial mínimo El MEM alfa (α-MEM) es el medio esencial mínimo de Eagle enriquecido con todos los aminoácidos no esenciales, piruvato de sodio, ácido lipoico, ácido ascórbico, biotina y vitamina B12, y se suministra con o sin ribonucleósidos y desoxirribonucleósidos. Utiliza la misma base salina que el MEM —2200 mg/L de bicarbonato de sodio ajustados a una atmósfera de 5% CO2, 1000 mg/L de glucosa y 1.8 mM de calcio— y es el medio estándar para células estromales mesenquimales, cultivos de médula ósea, osteoblastos, selección de CHO-DXB11 y CHO-DG44 y muchos tipos de células primarias. La versión sin nucleósidos es imprescindible para los sistemas de selección basados en HAT y en metotrexato.
  • Medio RPMI 1640 El RPMI 1640 es un medio de cultivo celular basal desarrollado en el Roswell Park Memorial Institute en 1966 para el cultivo de leucocitos humanos en suspensión. Contiene 2000 mg/L de glucosa (11.1 mM), 2000 mg/L de bicarbonato de sodio (23.8 mM) tamponados para una atmósfera de 5% CO2, una concentración de fosfato inusualmente alta (unos 5.6 mM), poco calcio (unos 0.42 mM) y un conjunto de componentes característico que incluye glutatión reducido, biotina, vitamina B12, ácido paraaminobenzoico e hidroxiprolina. Es el medio estándar para linfocitos, hibridomas y la mayoría de las líneas hematopoyéticas y linfoides adaptadas a suspensión, y normalmente se suplementa con un 10% de suero fetal bovino.
  • HBSS (solución salina equilibrada de Hank) El HBSS (solución salina equilibrada de Hank) es una solución salina equilibrada isotónica que se emplea para lavar células, transportar tejido, diluir reactivos y mantener células durante periodos breves fuera de su medio de cultivo. Contiene 8.0 g/L de cloruro de sodio, 1.0 g/L de D-glucosa, fosfato y 350 mg/L de bicarbonato de sodio, y se suministra con calcio y magnesio (1.26 mM de Ca y ~0.9 mM de Mg totales) o sin ellos. Su bajo contenido de bicarbonato significa que está diseñado para usarse a CO2 atmosférico o en recipientes cerrados, no para cultivos prolongados en un incubador con 5% CO2.
  • Tampones para cultivo celular Los tampones para cultivo celular mantienen el medio en el intervalo de pH 7,2-7,4 que necesitan las células de mamífero, frente a la carga ácida que estas generan al metabolizar. El sistema por defecto en casi todos los medios clásicos es el bicarbonato de sodio trabajando con el CO2 de la atmósfera del incubador, motivo por el cual el contenido de bicarbonato debe ajustarse a la configuración del incubador: unos 1,5-2,2 g/L de NaHCO3 para 5 % de CO2 y 3,7 g/L para 10 % de CO2. Los tampones orgánicos como el HEPES (pKa 7,48) se añaden a 10-25 mM para mantener el pH cuando los cultivos están fuera de una atmósfera de CO2, mientras que las disoluciones tamponadas con fosfato, como el PBS y el DPBS, se emplean para el lavado y la manipulación de corta duración, no para el crecimiento.
  • Medio químicamente definido Un medio químicamente definido es un medio de cultivo celular en el que se conocen la identidad y la concentración de todos sus componentes: sin suero, sin hidrolizados de proteínas y sin extractos indefinidos. Puede contener proteínas, siempre que sean recombinantes y de secuencia y concentración conocidas; por eso «químicamente definido» y «sin proteínas» son categorías distintas y no sinónimos. Los medios químicamente definidos eliminan la variabilidad entre lotes, el riesgo de agentes adventicios y la carga regulatoria asociados al suero, y son el estándar en la producción biofarmacéutica con sistemas CHO, HEK293 e hibridomas.
  • El rojo de fenol en los medios de cultivo celular El rojo de fenol (fenolsulfonftaleína) es un indicador de pH que se añade a los medios de cultivo celular a razón de unos 5-15 mg/L; vira a amarillo por debajo de aproximadamente pH 6,8 y a rosa o fucsia por encima de aproximadamente pH 8,2, mientras que el rojo anaranjado normal de un medio sano se sitúa cerca de pH 7,4. Que el medio se vuelva amarillo significa acidificación —casi siempre por el lactato del metabolismo celular, por un cultivo sobrecrecido o por contaminación bacteriana—, mientras que un viraje a rosa o púrpura significa que el medio se ha alcalinizado, casi siempre porque el CO2 ha escapado del tampón de bicarbonato. El rojo de fenol no ejerce ninguna acción tamponante y es puramente diagnóstico; utilice medio sin rojo de fenol para los ensayos de fluorescencia y absorbancia, y para el trabajo con células sensibles a los estrógenos, donde el colorante interfiere en la lectura.
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  • Disolución de glucosa en cultivo celular Una disolución de glucosa para cultivo celular es una disolución madre estéril y concentrada de D-glucosa, suministrada habitualmente a 300-450 g/L (30-45 % p/v), que se emplea para suplementar los medios basales y para alimentar cultivos que consumen glucosa más rápido de lo que el medio la aporta. La D-glucosa tiene una masa molecular de 180,16, de modo que 1 g/L equivale a 5,55 mM: los medios estándar van desde 1 g/L (5,5 mM) en el DMEM bajo en glucosa, pasando por 2 g/L (11,1 mM) en el RPMI 1640, hasta 4,5 g/L (25 mM) en el DMEM alto en glucosa. La glucosa se añade para evitar su agotamiento en cultivos prolongados o de alta densidad, y normalmente se esteriliza por filtración en lugar de en autoclave, porque calentar glucosa junto con aminoácidos genera productos de pardeamiento.
  • Tripsina frente a Accutase: cómo elegir un reactivo de disociación celular La tripsina es una serina proteasa pancreática que corta los enlaces peptídicos después de lisina y arginina; despega las células deprisa, pero sin discriminar: hay que detenerla con suero o con un inhibidor de tripsina, y corta las proteínas de superficie junto con los contactos de adhesión. Accutase es una mezcla propietaria de enzimas proteolíticas y colagenolíticas de origen invertebrado, suministrada en DPBS sin calcio ni magnesio con 0.5 mM de EDTA; actúa de forma más lenta y suave, no requiere paso de neutralización y conserva más epítopos de superficie. Elija tripsina para el subcultivo rutinario de líneas adherentes robustas, cuando importa la velocidad y las células vuelven directamente al cultivo; elija Accutase cuando las células recogidas son el experimento: citometría de flujo sobre marcadores de superficie, células madre pluripotentes, neuronas primarias o cualquier suspensión de células individuales en la que la viabilidad y el fenotipo deban sobrevivir a la recogida.
  • Ensayo de endotoxinas en el cultivo celular El ensayo de endotoxinas mide el lipopolisacárido bacteriano (LPS) presente en el agua de laboratorio, los medios, los sueros y los reactivos, y se expresa en unidades de endotoxina por mililitro (EU/mL), donde 1 EU equivale aproximadamente a 0.1–0.2 ng de la endotoxina de E. coli del estándar de referencia. Los métodos oficiales son el ensayo LAL (lisado de amebocitos de Limulus) en sus formatos de gelificación, turbidimétrico y cromogénico, recogidos en el capítulo USP <85>, y el ensayo con Factor C recombinante (rFC), libre de origen animal, recogido en USP <86>; los formatos cinéticos cuantifican hasta cerca de 0.001–0.005 EU/mL. Los límites prácticos en cultivo celular son 0.25 EU/mL para el agua, ≤1 EU/mL para la mayoría de los reactivos de grado cultivo celular y ≤10 EU/mL como estándar general del sector para el suero fetal bovino, con grados de baja endotoxina a ≤1 EU/mL y grados de endotoxina ultrabaja por debajo de 0.1 EU/mL. La endotoxina sobrevive al autoclave y atraviesa los filtros de 0.2 µm, de modo que hay que excluirla en el origen en lugar de intentar eliminarla después.

Fuentes

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