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Hitzeinaktivierung von fötalem Rinderserum (FBS)

Kurz gefasst

Die Hitzeinaktivierung von fötalem Rinderserum ist eine kontrollierte Inkubation von 30 Minuten bei 56 °C, die die hitzelabilen Proteine der Komplementkaskade zerstört, bevor das Serum dem Nährmedium zugesetzt wird. Das Serum wird aufgetaut, auf 37 °C gebracht, in ein Wasserbad mit 56 °C überführt, ab dem Moment, in dem das Serum selbst die Temperatur erreicht, genau 30 Minuten gehalten -- unter vorsichtigem Schwenken alle 5-10 Minuten --, danach sofort gekühlt und portioniert. Für die Routinekultur etablierter Zelllinien ist der Schritt meist unnötig, weil die Komplementaktivität in fötalem Serum niedrig ist und das Erhitzen zugleich labile Wachstumsfaktoren abbaut; für immunologische Untersuchungen und komplementempfindliche Zellen bleibt er gängige Praxis.

Was die Hitzeinaktivierung entfernt

Das Komplementsystem ist eine Kaskade aus etwa dreißig Plasmaproteinen und Teil der angeborenen Immunabwehr. Wird sie ausgelöst — klassisch durch einen an eine Zelloberfläche gebundenen Antikörper —, läuft sie über C1, C4, C2 und C3 bis zum Aufbau des Membranangriffskomplexes, der Poren in die Zielmembran schlägt und sie lysiert. Mehrere der frühen Komponenten, besonders C1q und C2, sind hitzelabil und verlieren bei 56 °C binnen Minuten ihre Aktivität. Das ist die gesamte biochemische Grundlage dieser Praxis.

Die Sorge in der Zellkultur ist, dass restliches Komplement im Serum kultivierte Zellen lysieren, antikörperbasierte Untersuchungen stören oder untersuchte Immunzellen aktivieren könnte. In einem Versuch, der komplementabhängige Zytotoxizität misst, ist das über den Serumzusatz eingebrachte Komplement ein unmittelbarer Störfaktor, und seine Entfernung ist nicht optional.

Zwei Dinge leistet die Hitzeinaktivierung nicht, obwohl sie ihr regelmäßig und fälschlich zugeschrieben werden:

  • Sie ist kein Sterilisationsschritt. Dreißig Minuten bei 56 °C inaktivieren Viren nicht zuverlässig und beseitigen keine Mykoplasmen. Serum wird durch die Sterilfiltration bei 0.1 µm während der Herstellung und, wo gefordert, durch Gammabestrahlung sicher gemacht — nicht durch das Wasserbad im Labor.
  • Sie verringert die Chargenschwankung nicht. Hitzeinaktiviertes Serum trägt dieselbe Chargenvariation wie das unbehandelte Material, und das Erhitzen kann sie sogar verstärken, weil hitzeempfindliche Bestandteile nicht in jeder Charge in gleicher Menge vorliegen.

Protokoll: FBS bei 56 °C für 30 Minuten hitzeinaktivieren

Der Fehlerfall dieses Verfahrens ist thermischer Natur: zu heiß oder zu lang zerstört Serumbestandteile, zu kühl oder zu kurz lässt das Komplement intakt. Alles Folgende dient dazu, die Temperatur genau zu führen.

  1. Tauen Sie das Serum langsam auf. Stellen Sie die Flasche von -20 °C auf 2-8 °C um und lassen Sie sie über Nacht stehen, bringen Sie sie dann auf Raumtemperatur. Tauen Sie eine volle Flasche nicht direkt bei 37 °C oder in der Mikrowelle auf; örtliche Überhitzung denaturiert Protein und erzeugt flockigen Niederschlag, der anschließend fälschlich der Inaktivierung angelastet wird.
  2. Mischen. Schwenken Sie die Flasche nach vollständigem Auftauen mehrfach über Kopf. Serum setzt sich bei der Lagerung ab, und eine ungemischte Flasche erwärmt sich ungleichmäßig.
  3. Auf 37 °C vorwärmen. Stellen Sie die Flasche in ein Wasserbad mit 37 °C, bis der Inhalt die Temperatur erreicht hat. Das verkürzt die Aufheizphase bis 56 °C, also genau den Teil des Zyklus, den Sie nicht genau steuern können.
  4. Das Bad auf 56 °C einrichten. Prüfen Sie das Bad mit einem kalibrierten Thermometer bei 56 °C, idealerweise auf plus/minus 0.5 °C genau. Viele Wasserbäder driften um 1-2 °C. Füllen Sie das Bad so, dass der Wasserspiegel über dem Serumspiegel in der Flasche steht, und stellen Sie die Flasche niemals auf das Heizelement.
  5. Eine Temperaturkontrolle vorbereiten. Stellen Sie eine identische Flasche mit demselben Volumen Wasser und einem Thermometer darin neben das Serum ins Bad. Nur so lässt sich verlässlich erkennen, wann das Serum selbst 56 °C erreicht hat und nicht bloß das Bad.
  6. Die Zeit beginnt, wenn die Kontrolle 56 °C erreicht, nicht wenn die Flasche eingesetzt wird. Eine 500-mL-Flasche braucht erhebliche Zeit zum Temperaturausgleich. Halten Sie genau 30 Minuten.
  7. Alle 5-10 Minuten vorsichtig schwenken. Serum ist zähflüssig und bildet Temperaturgradienten; Schwenken hält das gesamte Volumen auf Temperatur und verhindert eine überhitzte Schicht an der Glaswand. Schwenken, nicht schütteln — Schaumbildung denaturiert Protein an der Luftgrenzfläche.
  8. Sofort abkühlen. Bringen Sie die Flasche unmittelbar nach Ablauf der 30 Minuten in ein Eisbad oder auf 2-8 °C. Langsames Abkühlen auf der Arbeitsfläche fügt eine unkontrollierte zusätzliche Wärmedosis hinzu.
  9. In sterile Gefäße portionieren, in Einzelmengen und unter aseptischem Arbeiten in der Sicherheitswerkbank. Eine 500-mL-Flasche in 50-mL-Portionen aufzuteilen vermeidet wiederholtes Einfrieren und Auftauen und die Versuchung, eine angebrochene Flasche erneut zu erhitzen.
  10. Bei -20 °C und vor Licht geschützt lagern. Beschriften Sie deutlich als hitzeinaktiviert, mit Datum. Niemals zweimal hitzeinaktivieren — ein zweiter Zyklus verdoppelt den thermischen Schaden ungefähr, ohne zusätzlichen Nutzen.

Hinweis zur Menge: Wenn Sie mehrere Flaschen behandeln, überfüllen Sie das Bad nicht. Jede zusätzliche Flasche verzögert die Rückkehr des Bades auf 56 °C und verlängert die unkontrollierte Aufheizphase.

Warum 56 °C für 30 Minuten

Der Wert ist empirisch und historisch. Er stammt aus der klassischen Serologie, wo sich 56 °C für 30 Minuten als ausreichend erwiesen, um die hämolytische Komplementaktivität in menschlichen und tierischen Seren aufzuheben und dabei die Immunglobuline weitgehend zu erhalten. Als die Zellkultur von Säugerzellen den Serumzusatz übernahm, übernahm sie diese serologische Konvention unverändert mit.

Die Konvention wurde nicht durch einen Vergleichsversuch in der Zellkultur begründet und für diesen Zweck nie optimiert. Sie ist ein Schwellenwert, der Komplement verlässlich zerstört, und keine Einstellung, die sich als beste für kultivierte Zellen erwiesen hätte. Dieser Unterschied zählt, denn dieselben 30 Minuten bei 56 °C wirken auch auf alles Übrige im Serum.

Wann die Hitzeinaktivierung wirklich nötig ist

Es gibt eine reale, wenn auch schmale Gruppe von Anwendungen, in denen das Komplement im Serumzusatz aktiv stört und entfernt werden muss:

  • Untersuchungen zur komplementabhängigen Zytotoxizität (CDC). Der gesamte Messwert ist die komplementvermittelte Lyse, gezielt aus einer definierten Quelle zugeführt. Jedes über den Serumzusatz eingetragene Komplement verfälscht die Ausgangslage.
  • Immunologische Untersuchungen und Immunzellkultur. Untersuchungen zu Lymphozytenvermehrung und -aktivierung, gemischte Lymphozytenreaktionen und die Kultur primärer Immunzellen allgemein, wo Komplementkomponenten die untersuchten Zellen aktivieren oder lysieren können.
  • Hybridomkultur und Arbeiten mit monoklonalen Antikörpern. Gängige Laborpraxis, sowohl wegen der immunologischen Herkunft der Zellen als auch weil Komplement antikörperbasierte nachgeschaltete Messungen stören kann.
  • Komplementempfindliche Primär- und differenzierte Zelltypen. Eine Minderheit der Linien wächst tatsächlich besser auf hitzeinaktiviertem Serum. Coriell berichtet, nach der Umstellung auf Standardserum sei bei einer kleinen Untergruppe differenzierter Linien mit hitzeinaktiviertem Material eine bessere Leistung aufgetreten, was jedoch selten war.
  • Virusneutralisationsarbeiten, bei denen Komplement zur Neutralisation oder zur Lyse infizierter Zellen beitragen und damit einen Titer verfälschen könnte.

Fällt Ihr Vorgehen in eine dieser Gruppen, dann inaktivieren Sie — oder kaufen Sie vorinaktiviertes Serum, das unter besserer Temperaturführung hergestellt wird, als ein Laborwasserbad sie erreicht.

Wann sie unnötig ist: was die Belege sagen

Für die Routinehaltung etablierter Zelllinien stützen die Belege die Hitzeinaktivierung nicht als Voreinstellung.

Die Komplementaktivität in fötalem Rinderserum ist von vornherein niedrig. Triglia und Linscott fanden, dass die Spiegel der Komplementkomponenten in handelsüblichem FBS nur einen Bruchteil der Werte adulter Rinder betrugen und dass in zehn handelsüblichen FBS-Proben selbst im unverdünnten Serum keine Hämolyse nachweisbar war. Rinderföten haben die Immunexposition, die einen adulten Komplementtiter aufbaut, nicht durchlaufen, und das Serum wird durch Verarbeitung und Filtration weiter abgereichert.

Der Komplementweg braucht außerdem Antikörper, um zu starten. Der klassische Weg wird durch Antigen-Antikörper-Komplexe ausgelöst. In einer Standardkultur einer etablierten Linie in Rinderserum fehlt dieser Auslöser weitgehend.

Die übliche Handhabung inaktiviert bereits einen großen Teil des Rests. Serum wird vor dem Gebrauch routinemäßig aufgetaut und auf 37 °C erwärmt, und die frühen Komplementkomponenten sind so labil, dass allein diese Handhabung die Aktivität erheblich senkt.

Die direkte Erfahrung im großen Maßstab bestätigt das. Coriell stellte für seine Sammlungen von hitzeinaktiviertem auf normales fötales Rinderserum um und berichtete, dass die Hitzeinaktivierung für die meisten Zelllinien nicht nötig ist. Robuste Arbeitspferde — HEK293, CHO, NIH/3T3 und vergleichbare Fibroblastenlinien — zeigen keinen Vorteil.

Die ehrliche Zusammenfassung lautet, dass die Hitzeinaktivierung in den meisten Vorschriften ein Erbstück ist. Sie hält sich, weil sie in den Standardarbeitsanweisungen der Labore steht, weil es bequem ist, nur einen einzigen Serumbestand zu führen, und weil niemand derjenige sein möchte, der in einem funktionierenden Kultursystem eine Variable verändert hat.

Was die Hitzeinaktivierung kostet

Dreißig Minuten bei 56 °C sind kein selektiver Eingriff. Sie entfernen Komplement und wirken zugleich auf das übrige Serumproteom.

Verlust labiler Wachstumsfaktoren. Serum unterstützt das Wachstum über ein schlecht definiertes Gemisch aus Wachstumsfaktoren, Hormonen, Anheftungsfaktoren und Trägerproteinen, von denen einige hitzeempfindlich sind. Eine zu hohe Temperatur oder eine zu lange Einwirkung zerstört einen Teil davon, und genau deshalb sind die Toleranzen im Protokoll eng. Praktisch zeigt sich das meist als verringerte Plattierungs- und Klonierungseffizienz und nicht als veränderte Wachstumsrate der Gesamtkultur — Zellen bei geringer Dichte hängen am stärksten von den labilen Bestandteilen ab.

Verändertes Serumproteom. Das Erhitzen denaturiert und aggregiert einen Teil des Serumproteins. Für proteomische und metabolomische Arbeiten ist das ein unmittelbares Problem: Analyseprofile von Zellen aus hitzeinaktiviertem Serum unterscheiden sich von denen aus unbehandeltem Serum, und der Unterschied ist ein Artefakt des Zusatzes.

Störung von Arbeiten an extrazellulären Vesikeln. Es wurde gezeigt, dass die Hitzebehandlung die Proteinprofile EV-produzierender Zellen verändert, was hitzeinaktiviertes Serum zu einer schlechten Wahl für Isolierung und Charakterisierung extrazellulärer Vesikel (EV) macht. EV-Arbeiten erfordern in der Regel an EV abgereichertes Serum, hergestellt durch Ultrazentrifugation oder Tangentialflussfiltration, und das ist ein anderes Produkt als hitzeinaktiviertes Serum.

Niederschlag und Trübung. Die Proteinaggregation beim Erhitzen erzeugt flockiges Material oder allgemeinen Schleier. Das ist keine Kontamination, trübt aber das Medium, kann mit einer Kontamination verwechselt werden und bringt Partikel ein, die auf der Kulturoberfläche landen. Zu kräftiges Auftauen vorher und Überhitzen währenddessen verschlimmern beides.

Zeit und Kosten. Das Verfahren belegt pro Ansatz gut eine Dreiviertelstunde ein Wasserbad und eine Arbeitskraft, und es ist eine aseptische Handarbeit an einem teuren Reagenz, mit dem entsprechenden Kontaminationsrisiko.

Fehlerbilder und Fehlersuche

Starker Niederschlag oder eine gelartige Schicht nach der Inaktivierung. Das Serum wurde überhitzt — entweder hat das Bad überschwungen, die Flasche stand auf dem Heizelement, oder die Zeitmessung begann, bevor das Serum die Temperatur erreicht hatte, sodass es faktisch länger als 30 Minuten gehalten wurde. Feiner Niederschlag lässt sich über einen 0.22-µm-Filter entfernen, wobei etwas Protein verloren geht. Vorbeugung sind ein kalibriertes Bad, eine wassergefüllte Kontrollflasche und ein ausreichend hoher Wasserstand.

Das Serum schneidet schlechter ab als die unbehandelte Charge, die es ersetzt. Verdacht auf thermische Überdosis. Vergleichen Sie Plattierungs- und Klonierungseffizienz und nicht nur die Konfluenz nach 72 Stunden — das sind die Endpunkte, die am empfindlichsten auf den Verlust labiler Faktoren reagieren.

Komplementaktivität weiterhin nachweisbar. Das Serum hat nie 56 °C erreicht. Das ist das typische Ergebnis, wenn die Uhr beim Einsetzen der Flasche ins Bad gestartet wird statt beim Erreichen der Temperatur im Inhalt, und es kommt bei 500-mL-Flaschen häufig vor.

Schaum und denaturiertes Protein an der Oberfläche. Die Flasche wurde geschüttelt statt geschwenkt. Serumproteine denaturieren an einer Luft-Flüssigkeits-Grenzfläche leicht.

Trübes Medium nach dem Zusatz. Meist verschleppter Niederschlag. Prüfen Sie die Serumflasche vor Gebrauch gegen das Licht und filtrieren Sie bei Bedarf.

Uneinheitliche Ansätze zwischen Bedienenden. Unterschiedliche Beladung des Bades, unterschiedliche Flaschengrößen und unterschiedliche Zeitmessregeln erzeugen tatsächlich unterschiedliche Produkte. Wenn ein Labor hitzeinaktivieren will, braucht das Verfahren eine schriftliche Standardarbeitsanweisung, die die Kontrollflasche und die Regel für den Startzeitpunkt festlegt; andernfalls ist "hitzeinaktiviert" keine definierte Behandlung.

Hitzeinaktivierung, Gammabestrahlung und Sterilfiltration im Vergleich

Diese drei Behandlungen werden bei Kaufentscheidungen oft vermischt, dabei erfüllen sie völlig verschiedene Aufgaben.

Die Sterilfiltration über eine Membranfolge, die bei 0.1 µm endet, ist der Herstellungsschritt, der Serum mikrobiologisch kulturtauglich macht. Sie entfernt Bakterien und Pilze, und die Filtration bei 0.1 µm verringert Mykoplasmen erheblich. Sie ist nicht optional und wird nicht vom Anwender durchgeführt.

Die Gammabestrahlung ist ein Schritt zur Virusreduktion, den der Hersteller am gefrorenen Serum mit validierter Dosis vornimmt. Sie zielt auf virale Fremdagenzien, die die Filtration nicht entfernen kann. Sie kommt zum Einsatz, wo die nachgelagerte Anwendung biopharmazeutisch ist oder wo die Regulatorik eine dokumentierte Virusreduktion erwartet. Die Bestrahlung hat ihren eigenen kleinen Preis bei der Serumleistung.

Die Hitzeinaktivierung ist weder das eine noch das andere. Sie ist eine funktionelle Behandlung, die auf eine einzige Proteinklasse zielt, vom Anwender durchgeführt oder vorbehandelt geliefert wird und keinen nennenswerten Beitrag zur mikrobiologischen oder viralen Sicherheit leistet.

Daraus folgt: "Hitzeinaktiviert" auf einem Etikett beantwortet eine Frage zum Komplement und sagt nichts über die Sterilität. Geht es um Fremdagenzien, sind die zu prüfenden Angaben die Filtrationsfolge, der Status der Gammabestrahlung sowie Herkunftsland und Rückverfolgbarkeitsnachweise — nicht die Hitzebehandlung.

Hitzeinaktiviertes gegenüber unbehandeltem fötalem Rinderserum nach Anwendung. „Nicht erforderlich“ bedeutet, dass Komplement als Störfaktor nicht plausibel ist und der thermische Preis jeden Nutzen überwiegt; prüfen Sie es im eigenen System, bevor Sie eine eingeführte Vorschrift ändern.
AnwendungHitzeinaktiviertes Serum?Begründung
Routinehaltung kontinuierlicher Linien (HeLa, CHO, HEK293, NIH/3T3, Vero)Nicht erforderlichDie Komplementaktivität in FBS ist niedrig, dem klassischen Weg fehlt der Antikörperauslöser, und das routinemäßige Erwärmen auf 37 °C senkt bereits, was vorhanden ist
Untersuchungen zur komplementabhängigen Zytotoxizität (CDC)ErforderlichDas über den Serumzusatz eingetragene Komplement ist die gemessene Größe und darf nicht aus einer unkontrollierten Quelle stammen
Kultur primärer Lymphozyten, PBMC und Immunzellen; Vermehrungs- und AktivierungsuntersuchungenEmpfohlenKomplementkomponenten können die untersuchten Immunzellen aktivieren oder lysieren
Hybridomkultur und Herstellung monoklonaler AntikörperGängige PraxisZellen immunologischer Herkunft, und Komplement kann antikörperbasierte nachgeschaltete Messungen stören
Virusneutralisation und TitrationsuntersuchungenIm EinzelfallErforderlich, wo Komplement zur Neutralisation beitragen oder infizierte Zellen lysieren könnte; sonst nicht
Klonale Isolierung, Koloniebildung und Ausplattieren bei geringer DichteVermeidenDiese Endpunkte hängen am stärksten von hitzelabilen Wachstums- und Anheftungsfaktoren ab, sodass sich thermische Schäden hier zuerst zeigen
Isolierung und Charakterisierung extrazellulärer VesikelVermeidenDie Hitzebehandlung verändert die Proteinprofile EV-produzierender Zellen; verwenden Sie stattdessen an EV abgereichertes Serum, ein anderes Produkt
Proteomik und Metabolomik an kultivierten ZellenVermeidenDas Erhitzen verändert das Serumproteom und bringt Aggregate ein, die Analyseprofile verzerren
Insektenzellkultur (Sf9, Sf21) in serumhaltigem MediumNicht erforderlichFür dieses System ist kein Komplementweg der Säuger von Bedeutung
Serumfreie, chemisch definierte und von tierischen Bestandteilen freie AbläufeNicht zutreffendEs ist kein Serum vorhanden; Komplement fehlt schon durch die Auslegung

Häufig gestellte Fragen

Welche Temperatur und Dauer gelten für die Hitzeinaktivierung von FBS?

56 °C für 30 Minuten. Die 30 Minuten zählen ab dem Moment, in dem das Serum selbst 56 °C erreicht, nicht ab dem Einsetzen der Flasche ins Wasserbad -- deshalb stellt man eine wassergefüllte Kontrollflasche mit Thermometer daneben.

Warum wird Serum gerade bei 56 °C hitzeinaktiviert?

Die frühen Komplementkomponenten, namentlich C1q und C2, verlieren bei 56 °C binnen Minuten ihre Aktivität, während die Immunglobuline weitgehend erhalten bleiben. Der Wert wurde in der klassischen Serologie festgelegt und unverändert in die Zellkultur übernommen; für kultivierte Zellen wurde er nie optimiert.

Ist die Hitzeinaktivierung von FBS notwendig?

Für die meisten etablierten Zelllinien nein. Die Komplementspiegel in fötalem Rinderserum betragen nur einen Bruchteil der adulten Werte, und Triglia und Linscott fanden in zehn handelsüblichen FBS-Proben selbst unverdünnt keine nachweisbare Hämolyse. Coriell berichtete nach der Umstellung, dass die Hitzeinaktivierung für die meisten Zelllinien nicht nötig ist. Für komplementabhängige Untersuchungen und Arbeiten mit Immunzellen bleibt sie erforderlich.

Worin unterscheiden sich hitzeinaktiviertes und normales FBS?

Nur in der 30-minütigen Hitzebehandlung bei 56 °C. Hitzeinaktiviertes Serum hat die Komplementaktivität und einen Teil der hitzelabilen Wachstumsfaktoren verloren und kann feinen Niederschlag aus Proteinaggregation mitführen. Beide Produkte sind gleich steril, denn die Sterilität stammt aus der Filtration bei 0.1 µm beim Hersteller und nicht aus dem Erhitzen.

Tötet die Hitzeinaktivierung Viren oder Mykoplasmen im Serum ab?

Nein. Dreißig Minuten bei 56 °C sind kein validierter Virusinaktivierungsschritt und beseitigen keine Mykoplasmen. Die mikrobiologische Sicherheit stammt aus der Sterilfiltration bei 0.1 µm während der Herstellung, die Verringerung des Virusrisikos aus der Gammabestrahlung, wo diese spezifiziert ist.

Kann ich Serum zweimal hitzeinaktivieren?

Nein. Ein zweiter Zyklus verdoppelt den thermischen Schaden an den labilen Serumbestandteilen ungefähr und bringt keinen weiteren Nutzen, weil das Komplement schon beim ersten Mal zerstört wurde. Inaktivieren Sie eine bereits als hitzeinaktiviert gekennzeichnete Flasche niemals erneut.

Warum ist mein Serum nach der Hitzeinaktivierung trüb geworden oder hat einen Niederschlag gebildet?

Proteinaggregation durch Überhitzung. Häufige Ursachen sind ein Bad, das über 56 °C hinausgeschwungen ist, eine Flasche auf dem Heizelement, zu kräftiges Auftauen vor dem Ansatz oder eine Zeitmessung, die das Serum faktisch länger als 30 Minuten über Temperatur gehalten hat. Feiner Niederschlag lässt sich durch Filtration bei 0.22 µm entfernen, zum Preis von etwas Protein.

Sollte ich Serum für Stammzell- oder Primärkulturen hitzeinaktivieren?

Nicht standardmäßig. Diese Kulturen reagieren am empfindlichsten auf den Verlust hitzelabiler Wachstums- und Anheftungsfaktoren, sodass eine Chargenprüfung und ein qualifiziertes Serum weit mehr zählen als die Hitzebehandlung. Inaktivieren Sie nur, wenn für die konkrete Vorschrift oder den konkreten Zelltyp gezeigt wurde, dass es nötig ist.

Brauche ich hitzeinaktiviertes Serum für die Insektenzellkultur?

Nein. Sf9- und Sf21-Systeme haben keinen Komplementweg der Säuger, der stören könnte, sodass die Begründung für die Behandlung entfällt. Die meisten Arbeiten mit Insektenzellen laufen ohnehin inzwischen in serumfreien Medien.

Ist es besser, vorinaktiviertes FBS zu kaufen oder im Labor selbst zu inaktivieren?

Wenn Sie es wirklich brauchen, ist gekauftes vorinaktiviertes Serum in der Regel besser kontrolliert. Hersteller verwenden validierte, überwachte Wärmeprozesse; ein Laborwasserbad kann um 1-2 °C driften, und die Aufheizzeit einer 500-mL-Flasche ist schwer zu steuern. Die Behandlung im Haus lohnt sich vor allem dann, wenn Sie bereits eine qualifizierte Charge unbehandelten Serums haben und einen Teil davon inaktivieren möchten.

Verringert die Hitzeinaktivierung die Chargenschwankung des Serums?

Nein, sie kann sie sogar verschlimmern. Hitzeinaktiviertes Serum unterliegt derselben Chargenvariation wie unbehandeltes, und das Erhitzen baut hitzeempfindliche Bestandteile in verschiedenen Chargen unterschiedlich stark ab. Die einzige Kontrolle über die Schwankung ist die Chargenprüfung an den eigenen Zellen und Endpunkten.

Wie sollte hitzeinaktiviertes Serum gelagert werden?

In sterile Einwegbehälter portioniert und bei -20 °C eingefroren, vor Licht geschützt. Einzelportionen vermeiden wiederholtes Einfrieren und Auftauen, das dem Serum selbst schadet, und nehmen jede Versuchung, eine angebrochene Flasche erneut zu erhitzen.

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  • Essenzielle und nicht essenzielle Aminosäuren in der Zellkultur In der Zellkultur heißt eine Aminosäure essenziell, wenn kultivierte Säugerzellen sie nicht in ausreichender Menge selbst bilden können und sie deshalb im Medium vorliegen muss -- dreizehn davon, die von Harry Eagle bestimmte Gruppe, darunter Arginin, Cystin, Tyrosin und Glutamin, die ernährungsphysiologisch nicht als essenziell gelten. Die sieben nicht essenziellen Aminosäuren -- Glycin, Alanin, Asparagin, Asparaginsäure, Glutaminsäure, Prolin und Serin -- können von den meisten Zellen synthetisiert werden und werden dennoch zugesetzt, weil ihre Herstellung Kohlenstoff, ATP und Reduktionsäquivalente verbraucht, die sonst in das Wachstum fließen würden. Ein Supplement MEM NEAA 100X enthält alle sieben zu je 10 mM und liefert damit in Arbeitsstärke je 0.1 mM; geben Sie es zu MEM oder DMEM, die wenige oder keine enthalten, und lassen Sie es bei Ham's F-12, IMDM und DMEM/F-12 weg, die bereits alle sieben mitbringen.
  • Phenolrot im Zellkulturmedium Phenolrot (Phenolsulfonphthalein) ist ein pH-Indikator, der Zellkulturmedien in etwa 5-15 mg/L zugesetzt wird; unterhalb von etwa pH 6.8 schlägt er nach Gelb um, oberhalb von etwa pH 8.2 nach Rosa bis Fuchsia, während das normale Rot-Orange eines gesunden Mediums nahe pH 7.4 liegt. Wird das Medium gelb, ist es sauer geworden — fast immer durch Lactat aus dem Zellstoffwechsel, aus einer überwachsenen Kultur oder aus bakterieller Kontamination. Wird es rosa oder violett, ist es alkalisch geworden, nahezu immer weil CO2 aus dem Bicarbonatpuffer entwichen ist. Phenolrot puffert selbst nicht und ist rein diagnostisch; verwenden Sie phenolrotfreies Medium für Fluoreszenz- und Absorptionstests sowie für Arbeiten an östrogenempfindlichen Zellen, wo der Farbstoff die Messung stört.
  • Trypsin-EDTA Trypsin-EDTA ist ein Reagenz zur Zelldissoziation, das die Serinprotease Trypsin — sie spaltet Peptidbindungen C-terminal von Lysin- und Argininresten in Zelloberflächen- und Matrixproteinen — mit dem Komplexbildner EDTA kombiniert, der die von Zelladhäsionsmolekülen benötigten Calcium- und Magnesiumionen bindet. Geliefert wird es in einer Calcium- und Magnesium-freien ausgewogenen Salzlösung, meist mit 0.05% Trypsin (0.5 g/L) für gängige Zelllinien und 0.25% (2.5 g/L) für fest anhaftende Zellen und Primärkulturen. Üblich sind 2-5 Minuten bei 37 °C, gefolgt von der sofortigen Neutralisation mit serumhaltigem Medium oder einem definierten Trypsininhibitor.

Quellen

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