Referenz

Chemisch definiertes Medium

Kurz gefasst

Ein chemisch definiertes Medium ist ein Zellkulturmedium, bei dem Identität und Konzentration jedes einzelnen Bestandteils bekannt sind — kein Serum, keine Proteinhydrolysate, keine undefinierten Extrakte. Es darf dennoch Proteine enthalten, sofern diese rekombinant sind und in bekannter Sequenz und Konzentration vorliegen; genau deshalb sind chemisch definiert und proteinfrei zwei verschiedene Kategorien und keine Synonyme. Chemisch definierte Medien beseitigen die Chargenschwankungen, das Fremdagenzien-Risiko und den regulatorischen Aufwand des Serums und sind der Standard für die biopharmazeutische Produktion in CHO-, HEK293- und Hybridomsystemen.

Die Definition, präzise formuliert

Ein Medium ist chemisch definiert, wenn die chemische Identität und die Konzentration jedes einzelnen Bestandteils bekannt sind.

Dieses Kriterium schließt per Definition aus:

  • Serum (fötales Kälberserum, Serum neugeborener Kälber, Humanserum), das Tausende von Proteinen, Lipiden, Hormonen und Metaboliten in Konzentrationen enthält, die von Charge zu Charge und von Spendertier zu Spendertier schwanken
  • Proteinhydrolysate und Peptone — aus Soja, Weizen, Hefe oder Casein — also enzymatische Aufschlüsse mit undefinierten Peptidgemischen unbekannter Sequenz
  • Gewebe- und Pflanzenextrakte, konditioniertes Medium, Thrombozytenlysat und jede andere biologische Zubereitung nicht charakterisierter Zusammensetzung

Protein ist damit nicht ausgeschlossen. Ein chemisch definiertes Medium darf rekombinantes humanes Insulin, rekombinantes Transferrin, rekombinantes Albumin oder einen rekombinanten Wachstumsfaktor enthalten, denn jedes davon ist ein einzelnes Molekül bekannter Sequenz, das in bekannter Konzentration zugesetzt wird. Das ist der am häufigsten missverstandene Punkt und der Grund, weshalb „chemisch definiert" und „proteinfrei" zwei unterschiedliche Kennzeichnungen sind, die sich lediglich überschneiden.

Ebenso wichtig ist, was die Definition nicht zusichert. Chemisch definiert sagt nichts darüber aus, ob ein Medium frei von tierischen Bestandteilen ist — aus Pankreas gewonnenes Rinderinsulin ist ein definiertes Molekül, aber tierischen Ursprungs. Und es sagt nichts über die Leistungsfähigkeit aus. Ein chemisch definiertes Medium ist ein Medium, dessen Zusammensetzung Sie kennen; das ist die Voraussetzung für Kontrolle und Reproduzierbarkeit, aber keine Garantie für höhere Ausbeute.

Die Kategorienleiter: serumfrei, tierfrei, proteinfrei, chemisch definiert

Diese vier Begriffe werden in Katalogen locker und in Zulassungsunterlagen streng verwendet. Sie bilden keine einzelne Skala, und wer versteht, wie sie sich überschneiden, vermeidet teure Beschaffungsfehler.

Serumhaltig. Der klassische Ansatz: ein Basalmedium wie DMEM oder RPMI 1640 plus 5–20 % fötales Kälberserum. Das Serum liefert alles, was das Basalmedium auslässt — Lipide und Cholesterin, Transferrin und Eisen, Albumin als Trägermolekül und Entgifter, Wachstumsfaktoren, Hormone, Anheftungsfaktoren und Proteaseinhibitoren. Es ist bequem und nahezu universell permissiv, und es ist zugleich die größte Einzelquelle von Schwankungen in der Zellkultur.

Serumfrei (SFM). Kein Serum. Die Funktionen des Serums werden durch gezielte Zusätze ersetzt, darunter aufgereinigte oder rekombinante Proteine, Hydrolysate, Lipidzusätze und definierte Hormoncocktails wie ITS (Insulin, Transferrin, Selen) oder dessen Varianten. Serumfrei bedeutet nicht definiert: Ein serumfreies Medium mit Sojahydrolysat ist undefiniert.

Frei von tierischen Bestandteilen (AOF / ACF / ADCF). Kein Bestandteil tierischen Ursprungs in der Formulierung oder ihrer Herstellung, einschließlich der Rohstoffe der Rohstoffe. Pflanzliche Hydrolysate und rekombinante Proteine aus nicht-tierischen Wirtssystemen sind zulässig. Das ist eine Aussage über die Herkunft der Rohstoffe, also über Biosicherheit und Fremdagenzien-Risiko, keine Aussage über die Zusammensetzung — ein ADCF-Medium mit Sojahydrolysat ist tierfrei, aber nicht definiert. Xenofrei ist der verwandte Begriff aus der humanen Zelltherapie und bedeutet frei von nicht-humanen tierischen Bestandteilen; ein xenofreies Medium darf humane Materialien wie Humanserumalbumin oder humanes Thrombozytenlysat enthalten.

Proteinfrei. Kein Protein jedweder Art, auch kein rekombinantes. Peptide und Hydrolysate können weiterhin enthalten sein, weshalb proteinfrei ebenfalls nicht automatisch definiert bedeutet.

Chemisch definiert (CD). Jeder Bestandteil ist nach Identität und Konzentration bekannt. Konstruktionsbedingt immer serumfrei und hydrolysatfrei. Darf rekombinante Proteine enthalten. Proteinfrei chemisch definiert (PFCD) ist die strengste gebräuchliche Kategorie: definiert und völlig proteinfrei, wobei die Funktionen von kleinen Molekülen, synthetischen Peptiden, Lipidemulsionen und chelatierten Metallionen übernommen werden.

Die Beziehungen sollte man ausdrücklich benennen, denn hier entsteht die meiste Verwirrung: Jedes chemisch definierte Medium ist serumfrei, aber die meisten serumfreien Medien sind nicht chemisch definiert. Ein proteinfreies Medium ist nicht zwangsläufig chemisch definiert. Ein tierfreies Medium ist nicht zwangsläufig chemisch definiert. Und ein chemisch definiertes Medium ist nicht zwangsläufig frei von tierischen Bestandteilen.

Was in einem definierten Medium das Serum ersetzt

Ein definiertes Medium aufzubauen bedeutet, jede Funktion des Serums einzeln zu ersetzen. In der Praxis dienen die Zusätze genau dazu.

Eisenversorgung. Zellen benötigen Eisen und können freie Fe(III)-Ionen nicht effizient aufnehmen; im Serum liefert Transferrin das Eisen. Definierte Medien setzen rekombinantes humanes Transferrin ein oder — in proteinfreien Formulierungen — einen synthetischen Chelatbildner wie Eisen(III)-ammoniumcitrat, Eisen(III)-citrat oder einen Hydroxypyridinon-Eisenchelatkomplex.

Insulinsignal. Rekombinantes humanes Insulin mit etwa 5–10 mg/L oder das stabilere Analogon LONG-R3 IGF-1 in Produktionsmedien. Dies ist in einer definierten Formulierung meist der stärkste einzelne Wachstumstreiber.

Selen. Natriumselenit im unteren nanomolaren bis mikromolaren Bereich, benötigt als Cofaktor der Glutathionperoxidase und der Thioredoxinreduktase. Ohne Selen sammeln Zellen in einem serumfreien Medium oxidative Schäden an.

Lipide. Serum liefert Cholesterin, Fettsäuren und Phospholipide. Definierte Medien verwenden ein chemisch definiertes Lipidkonzentrat — typischerweise Cholesterin sowie Arachidon-, Linol-, Linolen-, Myristin-, Öl-, Palmitin- und Stearinsäure, gelöst mit einem synthetischen Tensid wie Pluronic F-68 und, wo zulässig, einem Cyclodextrin als Trägermolekül. Suspensionslinien wie CHO und NS0 sind besonders cholesterinabhängig.

Antioxidative und Transportkapazität. Albumin bindet und entgiftet im Serum unter anderem freie Fettsäuren und reaktive Spezies. In definierten Medien, die Protein zulassen, übernimmt rekombinantes Albumin diese Aufgabe; proteinfreie Formulierungen arbeiten stattdessen mit niedermolekularen Antioxidantien, zusätzlichem Selen und einer sorgfältigen Kontrolle der Spurenmetalle.

Spurenelemente. Kupfer, Zink, Mangan, Molybdän, Vanadium, Nickel und weitere im nanomolaren Bereich. Das Serum liefert sie unsichtbar mit; ein definiertes Medium muss sie ausweisen, und ein falsch abgestimmtes Spurenelementpaket ist ein häufiger Grund dafür, dass eine definierte Formulierung hinter den Erwartungen zurückbleibt.

Scherschutz. Pluronic F-68 mit 0.1–1 g/L für Suspensions- und Bioreaktorkultur; es schützt die Zellen ohne Serumprotein vor Schäden durch Begasung und Rührbewegung.

Anheftungsfaktoren. Für adhärente Zellen rekombinantes Fibronektin, Vitronektin oder Laminin oder eine definierte synthetische Oberflächenbeschichtung.

Das Basalmedium darunter ist meist kein klassisches. Die meisten definierten Formulierungen nutzen eine nährstoffreiche, hochosmolare proprietäre Basis — häufig von DMEM/F-12 abgeleitet —, weil klassische Medien wie DMEM und RPMI unter der Annahme entwickelt wurden, dass Serum ihre Lücken füllt.

Warum definierte Medien eingesetzt werden

Reproduzierbarkeit. Die Chargenschwankung des Serums ist in den meisten Zellkulturen die größte unkontrollierte Variable. Zwei FBS-Chargen können sich in wachstumsfördernder Wirkung, Hormongehalt und Lipidprofil erheblich unterscheiden — deshalb testen Labore Chargen aus und kaufen dann Jahresvorräte. Ein definiertes Medium beseitigt diese Variable vollständig: Dieselbe Formulierung verhält sich 2026 genauso wie 2020.

Regulatorische Position und Biosicherheit. Serum trägt ein Fremdagenzien-Risiko: Viren, Mykoplasmen und historisch auch Bedenken hinsichtlich transmissibler spongiformer Enzephalopathien. Behörden erwarten für tierische Rohstoffe in allen Produkten für die humane Anwendung eine Risikominimierung und deren Dokumentation. Ein chemisch definierter, von tierischen Bestandteilen freier Prozess streicht einen ganzen Abschnitt dieses Aufwands. Gerade in der Zell- und Gentherapie sind definierte und xenofreie Medien faktisch eine Erwartung und keine Option.

Nachgelagerte Aufreinigung. Serum bringt Gramm pro Liter an Protein ein, das vom rekombinanten Produkt abgetrennt werden muss. Ein definiertes Medium — besonders ein proteinfreies — vereinfacht Einfang- und Feinreinigungsschritte erheblich und erhöht die Produktreinheit.

Interpretierbarkeit der Versuche. In Signaltransduktions-, Stoffwechsel-, Endokrinologie- und Wirkstoffstudien bringt Serum Hormone, Wachstumsfaktoren, Bindeproteine und Lipide ein, die die Messung verfälschen. Serumalbumin bindet hydrophobe Verbindungen und verschiebt die wirksamen Wirkstoffkonzentrationen. Definierte Medien sorgen dafür, dass Dosis-Wirkungs-Daten das bedeuten, was Sie annehmen.

Verfügbarkeit und Kosten im Maßstab. Das Serumangebot ist begrenzt, preisvolatil und ethisch umstritten. Im Produktionsmaßstab ist ein definiertes Medium sowohl besser planbar als auch in großen Mengen meist günstiger.

Wo Serum weiterhin sinnvoll ist: in der explorativen Primärzellkultur, bei etablierten Protokollen, für die keine definierte Alternative validiert wurde, und überall dort, wo der Aufwand der Adaptation den Nutzen der beseitigten Variable übersteigt. Definierte Medien sind nicht grundsätzlich besser; sie sind besser, wenn Kontrolle wichtig ist.

Auswahl und Umstellung auf ein definiertes Medium

Die Auswahl ist zelllinienspezifisch. Ein universelles chemisch definiertes Medium gibt es nicht. CD-Medien werden gegen einen bestimmten Wirt entwickelt und optimiert — CHO, HEK293, BHK-21, NS0, Hybridom, Vero, iPSC — und eine Formulierung, die für CHO gut funktioniert, trägt HEK293 häufig überhaupt nicht. Gehen Sie vom Wirt aus, dann von der Anwendung: Expansion, transiente Transfektion, stabile Produktion, Virusproduktion und Differenzierung begünstigen jeweils andere Formulierungen.

Adaptation ist ein Prozess, kein Austausch. Zellen, die über viele Passagen in Serum gehalten wurden, haben Stoffwechselwege herunterreguliert, die sie nicht brauchten. Zwei Vorgehensweisen sind üblich:

Schrittweise Adaptation. Den Serumanteil stufenweise senken — 10 %, 5 %, 2,5 %, 1 %, 0,5 %, 0 % — und auf jeder Stufe zwei bis drei Passagen halten, bis sich Wachstumsrate und Viabilität erholt haben, bevor weiter reduziert wird. Langsamer, aber mit höherer Erfolgsquote und weniger genetischer Drift.

Direkte Adaptation. Mit hoher Dichte direkt in das definierte Medium aussäen und die Erholungsphase durchpassagieren. Schneller, wo es gelingt, und es gelingt bei robusten Suspensionslinien häufiger als bei adhärenten oder primären Zellen.

In beiden Fällen höher aussäen als sonst — Zellen in einem definierten Medium reagieren weit empfindlicher auf selbst sezernierte konditionierende Faktoren — und damit rechnen, dass die Kultur über mehrere Passagen schlecht aussieht, bevor sie sich erholt. Halten Sie in jeder Phase eine eingefrorene Rückstellung der serumgezogenen Zellen bereit. Die Adaptation dauert typischerweise vier bis acht Wochen.

Danach validieren, und nicht nur die Wachstumsrate. Adaptierte Zellen können sich von der Ausgangslinie in Verdopplungszeit, Stoffwechselprofil, Glykosylierung des sezernierten Proteins, Oberflächenmarkerexpression und Transfektionseffizienz unterscheiden. Erheben Sie die für Sie relevanten Assays neu als Basiswerte und legen Sie im definierten Medium eine neue Masterzellbank an.

Praktische Hinweise. Definierte Medien werden häufig ohne L-Glutamin geliefert, damit es frisch zugesetzt oder durch das stabile Dipeptid L-Alanyl-L-Glutamin ersetzt werden kann. Viele sind als Pulver für die Rekonstitution im großen Maßstab erhältlich. Da kein Serumprotein Ausschläge in pH-Wert, Osmolalität und Scherbelastung abpuffert, verzeihen Kulturen in definiertem Medium Prozessfehler schlechter — steuern Sie Zufütterung, CO2 und Rührbewegung strenger als mit Serum.

Häufige Missverständnisse

„Chemisch definiert bedeutet proteinfrei." Nein. Ein CD-Medium darf rekombinantes Insulin, Transferrin oder Albumin enthalten. Proteinfrei chemisch definiert (PFCD) ist die eigenständige, strengere Kategorie.

„Serumfrei bedeutet definiert." Nein. Die meisten serumfreien Medien enthalten pflanzliche oder Hefehydrolysate, also undefinierte Peptidgemische.

„Tierfrei bedeutet definiert." Nein. Sojahydrolysat ist frei von tierischen Bestandteilen und zugleich völlig undefiniert.

„Chemisch definiert bedeutet tierfrei." Nicht zwangsläufig. Rinderinsulin oder tierisch gewonnenes Cholesterin sind definierte Moleküle tierischen Ursprungs. Wenn Sie beide Eigenschaften benötigen, suchen Sie nach einem Medium, das als chemisch definiert und ADCF beziehungsweise frei von tierischen Bestandteilen ausgewiesen ist.

„Ein definiertes Medium lässt alles wachsen." Definierte Medien sind wirtsspezifisch und in der Regel weniger permissiv als serumhaltige Medien. Das ist der unmittelbare Preis dafür, das Serum zu entfernen.

„Die Adaptation ist in einer Woche erledigt." Vier bis acht Wochen sind typisch, und die adaptierte Linie sollte wie eine neue Linie behandelt und neu charakterisiert werden.

Serumhaltige, serumfreie, von tierischen Bestandteilen freie, proteinfreie und chemisch definierte Medien im Vergleich
KategorieSerumHydrolysate / ExtrakteProteineZusammensetzung vollständig bekanntTypische Anwendung
SerumhaltigJa (5–20 % FBS/NCS)MöglichTausende, undefiniertNeinRoutinekultur in der Forschung, Primärzellen, explorative Arbeiten
Serumfrei (SFM)NeinHäufig (Soja, Hefe, Weizen)Häufig, aufgereinigt oder rekombinantNeinForschungskultur mit geringerer Streuung, Hybridome, viele Produktionsprozesse
Frei von tierischen Bestandteilen (AOF / ACF / ADCF)NeinZulässig, wenn pflanzlichen UrsprungsZulässig, wenn rekombinant aus nicht-tierischem WirtNicht zwangsläufigBiosicherheitsgetriebene Prozesse, Impfstoff- und Biologikaherstellung
XenofreiKein nicht-humanes SerumZulässigHuman oder rekombinant zulässigNicht zwangsläufigHumane Zell- und Gentherapie, klinische MSC- und iPSC-Kultur
ProteinfreiNeinMöglich (Peptide zulässig)KeineNicht zwangsläufigVereinfachte nachgelagerte Aufreinigung, einige Produktionsprozesse
Chemisch definiert (CD)NeinNeinZulässig, wenn rekombinant und spezifiziertJaBiopharmazeutische Produktion, reproduzierbare Forschung, regulierte Prozesse
Proteinfrei chemisch definiert (PFCD)NeinNeinKeineJaStrengste regulatorische Position, sauberste Aufreinigung

Häufig gestellte Fragen

Was ist ein chemisch definiertes Medium?

Ein chemisch definiertes Medium ist ein Zellkulturmedium, bei dem die chemische Identität und die Konzentration jedes einzelnen Bestandteils bekannt sind. Es enthält kein Serum, keine Proteinhydrolysate und keine undefinierten biologischen Extrakte. Rekombinante Proteine wie Insulin oder Transferrin sind zulässig, weil es sich um einzelne Moleküle bekannter Sequenz handelt, die in bekannter Konzentration zugesetzt werden.

Ist chemisch definiert dasselbe wie proteinfrei?

Nein. Ein chemisch definiertes Medium darf rekombinante Proteine enthalten — Insulin, Transferrin, Albumin, Wachstumsfaktoren —, sofern jedes nach Identität und Konzentration spezifiziert ist. Ein proteinfreies Medium enthält überhaupt kein Protein, kann aber weiterhin undefinierte Peptidhydrolysate enthalten. Die strengste Kategorie, die weder das eine noch das andere enthält, ist proteinfrei chemisch definiert (PFCD).

Ist ein serumfreies Medium chemisch definiert?

In der Regel nicht. Die meisten serumfreien Medien enthalten Hydrolysate aus Pflanzen, Hefe oder Casein, also enzymatische Aufschlüsse undefinierter Zusammensetzung. Serumfrei bedeutet lediglich: kein Serum. Jedes chemisch definierte Medium ist serumfrei, umgekehrt gilt das nicht.

Worin unterscheidet sich frei von tierischen Bestandteilen von chemisch definiert?

Frei von tierischen Bestandteilen (auch ACF oder ADCF) ist eine Aussage zur Herkunft: Kein Bestandteil der Formulierung stammt vom Tier. Chemisch definiert ist eine Aussage zur Zusammensetzung: Jeder Bestandteil ist bekannt. Ein Medium mit Sojahydrolysat ist tierfrei, aber nicht definiert; ein Medium mit Rinderinsulin ist definiert, aber nicht tierfrei. Wenn Sie beides brauchen, achten Sie auf ein Produkt, das als chemisch definiert und ADCF ausgewiesen ist.

Was bedeutet xenofrei?

Xenofrei bedeutet frei von nicht-humanen tierischen Bestandteilen. Der Begriff stammt aus der humanen Zelltherapie, in der humane Materialien wie Humanserumalbumin oder humanes Thrombozytenlysat zulässig sind, Rinder- oder Schweinematerialien dagegen nicht. Xenofrei ist nicht dasselbe wie chemisch definiert — ein xenofreies Medium kann undefiniertes humanes Material enthalten.

Was ersetzt das Serum in einem chemisch definierten Medium?

Jede Funktion wird einzeln ersetzt: rekombinantes Transferrin oder ein synthetischer Eisenchelatkomplex für die Eisenversorgung, rekombinantes Insulin für das Wachstumssignal, Natriumselenit für die antioxidativen Enzyme, ein chemisch definiertes Lipidkonzentrat für Cholesterin und Fettsäuren, ein spezifiziertes Spurenelementpaket, Pluronic F-68 als Scherschutz in Suspension und rekombinante Anheftungsfaktoren für adhärente Zellen.

Wie lange dauert die Adaptation von Zellen an ein chemisch definiertes Medium?

Typischerweise vier bis acht Wochen. Die schrittweise Adaptation senkt den Serumanteil stufenweise (10 %, 5 %, 2,5 %, 1 %, 0,5 %, 0 %) mit zwei bis drei Passagen je Stufe; die direkte Adaptation sät mit hoher Dichte unmittelbar in das definierte Medium aus und passagiert durch die Erholungsphase. Halten Sie in jeder Phase eine eingefrorene Rückstellung der serumgezogenen Zellen bereit und rechnen Sie damit, dass die Kultur über mehrere Passagen schlecht aussieht.

Warum werden chemisch definierte Medien in der biopharmazeutischen Produktion eingesetzt?

Aus drei Gründen. Die Konsistenz von Charge zu Charge ist weit besser als mit Serum, das in den meisten Prozessen die größte unkontrollierte Variable darstellt. Der Verzicht auf tierische Rohstoffe streicht eine ganze Kategorie an Fremdagenzien-Risiko und regulatorischer Dokumentation. Und ohne Serumprotein in der Ernte sind Einfang- und Feinreinigungsschritte deutlich einfacher und die Produktreinheit ist höher.

Funktionieren chemisch definierte Medien für alle Zelltypen?

Nein. Chemisch definierte Formulierungen werden gegen einen bestimmten Wirt entwickelt — CHO, HEK293, BHK-21, NS0, Hybridom, Vero, iPSC — und ein für einen Wirt optimiertes Medium trägt einen anderen oft nicht. Sie sind zudem in der Regel weniger permissiv als serumhaltige Medien, was der unmittelbare Preis für den Verzicht auf die breite, undefinierte Unterstützung des Serums ist. Wählen Sie zuerst nach der Wirtszelle aus.

Sind chemisch definierte Medien teurer als serumhaltige Medien?

Je Liter fertigem Medium ist eine definierte Formulierung oft vergleichbar mit oder günstiger als ein Basalmedium plus 10 % fötales Kälberserum, und der Abstand wächst im Produktionsmaßstab, wo Serumpreis und Lieferschwankungen dominieren. Der eigentliche Kostenblock sind Adaptation und Revalidierung — ein einmaliges Projekt, keine laufende Ausgabe.

Kann ich ein chemisch definiertes Medium für Primärzellen verwenden?

Manchmal, aber das ist der schwierigste Fall. Primärzellen wurden nicht auf Wachstum in Kultur selektiert und hängen im Allgemeinen am stärksten von der undefinierten Unterstützung durch Serum ab. Für bestimmte Primärzelltypen — mesenchymale Stromazellen, Keratinozyten, Endothelzellen — gibt es definierte und xenofreie Formulierungen, doch das sind zelltypspezifische Produkte und keine Universalmedien.

Benötigen definierte Medien weiterhin Glutamin?

Ja, und die meisten werden ohne geliefert, damit es frisch zugesetzt werden kann. L-Glutamin zerfällt in Lösung zu Ammoniak, das sich anreichert und toxisch wirkt. Viele definierte Produktionsmedien sehen stattdessen das stabile Dipeptid L-Alanyl-L-Glutamin vor, das Glutamin langsam freisetzt, sobald die Zellen es spalten, und so die Ammoniakbelastung in langen Fed-Batch-Läufen vermeidet.

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Quellen

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