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細胞培養基中的酚紅

重點摘要

酚紅(酚磺酞)是加在細胞培養基中的 pH 指示劑,含量大約 5-15 mg/L;在 pH 約 6.8 以下轉為黃色,在 pH 約 8.2 以上轉為粉紅到桃紅色,而健康培養基那種正常的橙紅色則落在 pH 7.4 附近。培養基變黃代表酸化,幾乎都是細胞代謝產生的乳酸,來自過度生長的培養或細菌汙染;培養基變粉紅或變紫則代表培養基轉為鹼性,原因幾乎都是 CO2 從碳酸氫鹽緩衝系統中逸失。酚紅本身沒有任何緩衝能力,純粹是診斷用的指標;螢光與吸光度分析,以及雌激素反應性細胞的實驗,都應改用無酚紅培養基,因為這個染料會干擾判讀。

酚紅是什麼,又在培養基裡做什麼

酚紅的化學名稱是酚磺酞,屬於磺酞類染料,以游離酸計算分子量為 354.4,培養基配方中所用的鈉鹽則為 376.4。大多數古典細胞培養基都加了它,理由只有一個:它是一種 pH 指示劑,而它的變色區間恰好橫跨哺乳動物細胞培養所處的 pH 範圍。

有幾件事值得先說清楚。酚紅不是緩衝劑。培養基中 5-15 mg/L 的含量約相當於 13-40 微莫耳濃度,對上碳酸氫鈉的 24-44 毫莫耳濃度——差了三個數量級。它對培養基 pH 穩定性的貢獻小到量不出來。它是讀數,不是控制手段。

它同樣不是養分、不是添加物,細胞也不需要它。每一種古典培養基都有無酚紅的版本,細胞在那些版本中的生長情形,與有顏色的版本完全相同。這個染料存在的唯一目的,是讓走過培養箱前的研究人員不必打開任何東西,一秒之內就看出某個培養是不是正往錯的方向走。

你的培養基裡有多少酚紅

各家配方的濃度並未統一,這也是為什麼同一種橙色在不同培養基裡代表的意義略有差別,以及為什麼 RPMI 的顏色看起來從來就跟 DMEM 不一樣。

培養基 酚紅(mg/L) 約略莫耳濃度
DMEM,高糖或低糖 15.0 約 40 uM
IMDM 15.0 約 40 uM
MEM(Eagle's) 10.0 約 27 uM
HBSS,含鈣與鎂 10.0 約 27 uM
DMEM/F-12(1:1) 8.1 約 22 uM
RPMI 1640 5.0 約 13 uM
Ham's F-12 營養混合培養基 1.2 約 3 uM

異數是 Ham's F-12,只有 1.2 mg/L,這正是 F-12 看起來比 DMEM 蒼白、褪色的原因,也是 1:1 混合的 DMEM/F-12 剛好落在中間、為 8.1 mg/L 的緣故。若要用顏色比較培養瓶,就只能比較裝著同一種培養基的瓶子。

有些平衡鹽溶液含酚紅,有些不含。HBSS 兩種形式都有販售;PBS 與 DPBS 通常不含酚紅。

判讀顏色:每種色調的意義

酚紅在 pH 6.8 到 8.2 之間由黃逐漸轉紅,文獻報告的 pKa 約在 7.7 到 8.0 之間。酸式在 443 nm 附近有最大吸收,鹼式則在 570 nm 附近,這就是同一個染料呈現兩種截然不同外觀的原因。

真正重要的習慣是拿參考品來對照。把培養瓶放在白色背景前,旁邊擺一瓶同溫度、同配方的新鮮培養基。單獨看顏色下判斷、跨兩種培養基比較,或對著有顏色的檯面看,都不可靠。下方的對照表列出實用的判讀方式。

在依顏色採取行動之前還有一個提醒:它是半定量的,而且會落後。培養在肉眼看出變化之前,可能早已處於代謝壓力;而你最後看到的色偏,反映的是數小時累積下來的酸負荷,不是細胞此刻的狀態。把顏色當成「該去顯微鏡下看看」的提示,而不是單獨成立的診斷。

培養基為什麼會變黃

黃色代表酸,而在細胞培養裡,酸幾乎都來自乳酸。培養中的細胞以很高的速率進行有氧糖解,把乳酸排入培養基;隨之而來的質子把碳酸氫鹽緩衝系統滴定下去,一旦 pH 降到約 6.8 以下,指示劑就完全轉為黃色形式。

常見原因,大致依發生頻率排列:

培養單純太密。 已匯合或過度匯合的單層,或接近高峰密度的懸浮培養,一天之內就能產生足夠的乳酸把培養基變黃。這是正常的生理現象,處理方式是換液或繼代培養。如果某一瓶總是趕在下一次預定換液前變黃,就少接種一些細胞,或提高換液頻率。

培養被放太久。 週末餓上一整輪是經典案例。葡萄糖下降、乳酸累積,培養泡在酸裡夠久之後,就算補上新鮮培養基,存活率仍然會掉。

細菌汙染。 細菌讓培養基變酸的速度遠快於哺乳動物細胞,而且通常同時讓它變混濁。典型徵象是昨天還好好的培養基,今天又鮮黃又混濁,高倍下常常還看得到會動的顆粒。丟棄,不要試圖挽救,並檢查同一次操作中經手過的其他東西。

CO2 太高,或培養基與培養箱不匹配。 為 5% CO2 設計的培養基放在 10% 的環境裡,從一開始就會偏酸。碳酸氫鹽必須與氣體環境相配:碳酸氫鈉低於約 1.5 g/L 的培養基適合大氣或 4% CO2,1.5-2.2 g/L 適合 5%,高於 3.5 g/L 則適合 10%。DMEM 的 3.7 g/L 是為 10% CO2 設計的,放在 5% 培養箱中相對於設計點會略偏酸——多數實驗室接受這一點,也不會出什麼問題,但當一瓶培養基從第一天就看起來偏橙時,知道這件事是有用的。

培養基為什麼會變粉紅或變紫

粉紅或桃紅代表鹼性,而在碳酸氫鹽緩衝的培養基中,鹼性幾乎都表示 CO2 已經離開了系統。碳酸氫鹽還在,與它平衡的碳酸卻已化為氣體逸失,pH 因而往上爬。

培養基被拿出培養箱。 這是最常見的假警報。培養瓶一拿到操作檯上就開始流失 CO2,幾分鐘內就看得出泛紅。這跟培養本身毫無關係。判斷顏色時要用剛從培養箱拿出來的瓶子,否則就得接受:任何在檯面上拍到的照片都會看起來比實際更鹼。

培養箱沒有在供應 CO2。 鋼瓶用完、閥門關著、調節器故障或感測器漂移,都會讓培養箱裡的每一瓶同時變粉紅。如果所有培養一起變粉紅,先懷疑培養箱而不是細胞——並且用獨立的量測儀確認 CO2 濃度,因為校正跑掉的感測器會一邊顯示設定值、一邊什麼都沒供應。

箱門一直開著,或培養箱塞太滿。 頻繁或長時間開門會讓設定值來不及回復。靠近前緣的培養瓶最先變粉紅。

瓶蓋沒鎖對,或用錯了容器。 通氣瓶蓋是設計來與培養箱氣體環境平衡的。在 CO2 培養箱裡把碳酸氫鹽培養基鎖上密封蓋,就無法平衡;而在檯面培養時用通氣蓋,則會讓 CO2 跑掉。瓶蓋要配合培養所在的環境。

碳酸氫鹽對該氣體環境而言太高。 這是偏酸情況的鏡像:2.2 g/L 碳酸氫鹽的 Earle's 鹽類配方,或 3.7 g/L 的 DMEM,放在大氣中會很快轉鹼。設計來在空氣中維持 pH 的,是 0.35 g/L 的 Hanks' 鹽類配方。

有些汙染源會讓培養基變鹼。 少數汙染微生物是提高 pH 而非降低 pH。粉紅加上混濁,在證明不是之前仍然要當成汙染處理。

顏色告訴不了你的事

有兩種失效模式重要到必須說白。

黴漿菌通常不會造成顏色改變,也不會讓培養基混濁。 遭黴漿菌感染的培養往往看起來完全正常——培養基清澈、顏色如常、細胞照樣生長——但這個微生物已經改變了代謝、基因表現與實驗結果。用顏色來篩檢黴漿菌毫無用處。唯一可靠的做法,是依固定週期以 PCR 或專用的檢測方法例行送驗。

顏色正常不代表培養基的養分還完整。 葡萄糖可能已大幅耗盡,麩醯胺酸可能已分解為氨,而指示劑幾乎不動。酚紅報告的是質子的收支,不報告別的。看起來顏色沒問題的培養,仍然可能正在挨餓。

還有一個實務上的界線值得記住:酚紅無法區分一瓶健康而濃密的培養和一瓶被汙染的培養,兩者都會把培養基變黃。告訴你是哪一種的是顯微鏡,不是顏色。

什麼時候該用無酚紅培養基

酚紅會干擾光學量測,這也是把它拿掉的主要理由。

吸光度分析。 這個染料在 443 nm 與 570 nm 附近有強烈吸收。後面那個吸收峰正好壓在好幾種標準比色分析的判讀波長上——MTT 通常在 570 nm 判讀,Griess 亞硝酸鹽分析約在 540 nm——因此殘留的酚紅會墊高空白值、壓縮動態範圍。即使分析本身有做培養基空白,帶顏色的背景仍然會犧牲靈敏度;而且由於這個染料的吸光度本身隨 pH 改變,背景會跟著每個孔的代謝狀態一起移動。最後這一點正是悄悄毀掉整盤實驗的原因:忙碌的孔和安靜的孔,背景並不相同。

螢光量測。 酚紅在綠色到橙色範圍貢獻寬廣的背景,並可能透過內濾效應淬熄訊號。活細胞影像、螢光微盤分析,以及細胞仍帶著培養基的流式細胞分析,都會因為改用無酚紅配方而受益。做影像時常見的選擇是無酚紅培養基搭配 HEPES,因為它同時能在顯微鏡載台這種沒有 CO2 環境的地方維持 pH。

雌激素反應性細胞的實驗。 留到下一節討論。

生物製劑生產與下游製程。 當某個培養基成分必須從產品中清除時,多餘的染料就是多餘的清除負擔,因此生產用培養基普遍採用無酚紅配方。

部分質譜與代謝體學流程, 因為這個染料及其雜質會以干擾離子的形式出現。

雌激素活性的爭議

這件事值得精確陳述,因為它被以走樣的形式廣泛流傳。

Berthois、Katzenellenbogen 與 Katzenellenbogen 在 1986 年報告,酚紅製劑在 15-45 微莫耳濃度下具有可測得的雌激素活性,而那正好就是這個染料在培養基中的存在範圍。他們發現它會與人類乳癌細胞株 MCF-7 的雌激素受體結合,親和力約為雌二醇的 0.001%(Kd 約 2 x 10^-5 M),並在雌激素受體陽性的 MCF-7 細胞中造成劑量依賴性的增生刺激,而在受體陰性的 MDA-MB-231 細胞中則沒有。

兩年後,Bindal 等人以 HPLC 與溶劑分配證明,這種受體結合與促生長活性並不屬於酚磺酞本身,而是來自市售製劑中脂溶性較高的雜質——其中一個被鑑定為雙(4-羥基苯基)[2-(苯氧磺醯基)苯基]甲烷——而且許多市售製劑中都存在足以造成干擾的量。相關研究也把陽離子運輸方面的效應歸因於一種脂溶性雜質。

無論責任落在哪個分子,實務上的結論都一樣:如果你研究的是雌激素反應,或任何位於雌激素受體訊息傳遞下游的事情,就使用無酚紅培養基。標準組合是無酚紅培養基搭配活性碳處理血清,這樣同時去掉了染料帶來的活性與血清貢獻的類固醇。某一批酚紅的純度不是你在實驗檯上能驗證的事,所以把這個變數移除,比假設自己拿到乾淨的批次可靠得多。

對於沒有雌激素受體、也不關心那條路徑的細胞來說,這並不構成換培養基的理由。

沒有指示劑時怎麼工作

改用無酚紅配方,代價是失去那個免費、連續、一眼可見的 pH 訊號,而換過去的實驗室往往低估了自己原本有多依賴它。被汙染的培養瓶會比較晚被發現,耗盡的培養基更晚。

有三項補償措施值得建立。第一,依據該細胞株在該接種密度下的生長曲線把換液排程固定下來,不要憑眼睛換液。第二,在關鍵時刻直接量 pH——用校正過的 pH 計量一份廢培養基,一分鐘就好。第三,若要進行長期的無酚紅實驗,就在同一排程下另外養一瓶有顏色的同株細胞當對照,好讓你對「沒有顏色的那幾瓶何時需要照顧」有個視覺參考。

加入 10-25 mM 的 HEPES 是無酚紅工作常見的搭配改動,因為它能在影像拍攝或較長時間的操作中,於培養箱之外維持 pH。HEPES 並不能取代指示劑——它處理的是穩定性,不是可見性——而且它自己也有需要考量的地方,包括光照下的光毒性。

最後釐清一個容易混淆的地方:酚紅在微生物學中也作為醣類發酵培養液的指示劑,那是另一個領域的另一種應用。本頁討論的是酚紅作為哺乳動物細胞培養基 pH 指示劑的用途。

碳酸氫鹽緩衝細胞培養基的酚紅顏色對照表。pH 為近似值;變色是漸進的,確切色調取決於培養基含多少酚紅。請以同配方的新鮮培養基作為對照來判讀顏色。
培養基顏色約略 pH代表的意義最可能的原因該怎麼做
深紫/桃紅8.2 以上強鹼性CO2 供應中斷、培養箱門沒關、密封蓋阻礙氣體平衡,或碳酸氫鹽含量對該氣體環境而言太高用獨立量測儀檢查 CO2 供應與感測器;檢查瓶蓋與容器型式;在顯微鏡下看過之前,不要先認定細胞已經死了
粉紅/洋紅7.8 - 8.2偏鹼漂移培養基被拿出培養箱、CO2 低於設定值,或培養基所需的 CO2 高於培養箱所供應的濃度如果瓶子放在檯面上,可以不理會。如果是在培養箱裡變粉紅的,就檢查 CO2
紅/鮭紅約 7.4正常、健康的培養碳酸氫鹽緩衝系統與培養箱 CO2 達成平衡不必處理
橙紅到橙色7.0 - 7.2輕度酸化,通常正常活躍生長、接近匯合的培養正常。照排程換液;並留意它多快走到這一步
橙黃6.8 - 7.0相當可觀的酸負荷培養太密、換液逾期,或接種密度過高立刻換液或繼代培養;動手前先在顯微鏡下看過
黃色6.8 以下嚴重酸化過度生長、培養基耗盡,或細菌汙染——尤其是同時變混濁時在顯微鏡下檢查。一天之內又混濁又變黃代表汙染:丟棄,並檢查同一次操作的其他成果
黃色且混濁,數小時內就變了低於 6.8在證明不是之前,一律當作細菌汙染細菌生長的速度蓋過哺乳動物細胞的代謝丟棄。不要在無菌操作檯內與乾淨的培養一起打開。檢討無菌操作技術與試劑批次
顏色正常、培養基清澈,細胞卻表現怪異約 7.4這種情況顏色給不了任何資訊黴漿菌不會造成顏色改變,也不會讓培養基混濁以 PCR 或專用檢測方法送驗;顏色不能用來篩檢黴漿菌

常見問題

酚紅在細胞培養基裡有什麼作用?

它是一種 pH 指示劑,會隨培養基的 pH 改變顏色:酸性時呈黃色,pH 7.4 附近呈紅色,鹼性時呈粉紅或桃紅色。它讓你一眼就看得出培養是因為代謝或汙染而酸化,還是因為 CO2 流失而轉鹼。它沒有任何營養或緩衝上的功能。

我的細胞培養基為什麼變黃?

變黃代表培養基已經變酸,通常是細胞代謝累積的乳酸所致——培養太密或過度生長,或是換液已經逾期。如果培養基很快變黃而且同時混濁,就要懷疑細菌汙染,先在顯微鏡下檢查再做任何處理。

培養基為什麼會變成粉紅色或紫色?

粉紅代表鹼性,通常的原因是碳酸氫鹽緩衝系統中的 CO2 流失。最常見的情況就只是培養瓶被放在培養箱外,幾分鐘內顏色就開始偏移。如果培養箱裡每一瓶同時變粉紅,就檢查 CO2 供應、調節器與感測器校正。

酚紅會影響細胞生長嗎?

對大多數細胞株而言不會。例外是雌激素反應性細胞:酚紅製劑在培養基所含的濃度下具有雌激素活性,會刺激 MCF-7 這類雌激素受體陽性細胞株的增生。這類實驗的標準做法,是無酚紅培養基搭配活性碳處理血清。

DMEM 裡的酚紅濃度是多少?

Gibco 的 DMEM 含 15 mg/L,約為 40 微莫耳濃度。RPMI 1640 含 5 mg/L、MEM 含 10 mg/L、DMEM/F-12 含 8.1 mg/L,而 Ham's F-12 只有 1.2 mg/L。這些差異正是同一種色調在不同培養基裡意義略有不同的原因。

酚紅有緩衝培養基的作用嗎?

沒有。在 5-15 mg/L 下它約相當於 13-40 微莫耳濃度,對上 24-44 毫莫耳濃度的碳酸氫鈉,對緩衝容量的貢獻可以忽略。把它拿掉完全不會改變培養基的 pH 穩定性。

什麼時候應該使用無酚紅培養基?

螢光類分析與活細胞影像時,因為染料會貢獻背景並可能淬熄訊號;在 540-570 nm 區間判讀的吸光度分析時,例如 MTT 與 Griess,因為它會墊高並擾動空白值;雌激素反應性細胞的實驗;以及生產製程中,多餘成分必須在下游被清除的情況。

酚紅會干擾 MTT 分析嗎?

會。MTT 的還原產物通常在約 570 nm 判讀,而那正好是酚紅鹼式的最大吸收波長。由於這個染料的吸光度會隨 pH 移動,各孔的背景會依代謝活躍程度而不同,因此單一空白值無法完全校正。請把培養基移除並清洗,或直接使用無酚紅培養基。

酚紅的 pH 變色範圍是多少?

變色由 pH 約 6.8 的黃色開始,經紅色到 pH 約 8.2 的桃紅色,文獻報告的 pKa 約在 7.7 到 8.0 之間。酸式在 443 nm 附近有最大吸收,鹼式則在 570 nm 附近。

酚紅可以用來偵測汙染嗎?

只能偵測一部分。細菌與黴菌汙染通常會很快讓培養基變酸並且混濁,所以顏色是有用的早期警訊。黴漿菌則通常完全不造成顏色改變、也不造成混濁,因此外觀正常的培養瓶並不能證明培養是乾淨的——黴漿菌必須依例行排程專門送驗。

酚紅對細胞有毒嗎?

在培養濃度下一般不具細胞毒性,許多細胞株數十年來都在含酚紅的培養基中例行培養。有文獻紀錄的疑慮是特定而非普遍的:與荷爾蒙反應性細胞株相關的雌激素活性,以及被歸因於市售製劑中脂溶性雜質的陽離子運輸效應。

Ham's F-12 為什麼看起來比 DMEM 淡那麼多?

因為它含的指示劑少得多——1.2 mg/L,對上 DMEM 的 15 mg/L。不同的不是 pH,而是報告 pH 的那個東西。這也是為什麼混合兩者的 DMEM/F-12 落在 8.1 mg/L、外觀居中,以及為什麼顏色只該在同配方的培養瓶之間比較。

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延伸閱讀

  • 細胞培養中的 HEPES 緩衝液 HEPES(4-(2-羥乙基)-1-哌嗪乙磺酸)是一種兩性離子有機緩衝液,用於細胞培養中,不必依賴培養箱 CO2 就能把培養基維持在生理 pH。它的 pKa 在 20-25 °C 約為 7.5、在 37 °C 約為 7.3,有效緩衝範圍大致涵蓋 pH 6.8-8.2,一般由無菌 1 M 儲備液以 10-25 mM 加入培養基。由於 HEPES 的緩衝作用不依賴碳酸/碳酸氫鹽平衡,添加 HEPES 的培養基在培養瓶離開 5% CO2 培養箱時,能抵抗快速的鹼性漂移。
  • DMEM(Dulbecco 改良 Eagle 培養基) DMEM 是把 Eagle 最低必需培養基的胺基酸與維生素濃度提高約四倍而來的基礎細胞培養基。它有高葡萄糖(4,500 mg/L,25 mM)與低葡萄糖(1,000 mg/L,5.6 mM)兩種型式,以 3,700 mg/L 碳酸氫鈉緩衝,必須另外添加血清或定義明確的添加物,並搭配 CO2 環境才能維持生理 pH。DMEM 是 HEK293、HeLa、NIH/3T3、Vero 與貼壁型 CHO 等貼壁細胞株,以及大多數初代纖維母細胞的預設培養基。
  • RPMI 1640 培養基 RPMI 1640 是一種基礎細胞培養基,1966 年由羅斯威爾帕克紀念研究所為了在懸浮狀態下培養人類白血球而開發。它含有 2,000 mg/L 葡萄糖(11.1 mM)、2,000 mg/L 碳酸氫鈉(23.8 mM,為 5% CO2 環境而設定的緩衝)、異常高的磷酸鹽(約 5.6 mM)、偏低的鈣(約 0.42 mM),以及一組相當特殊的成分——還原型麩胱甘肽、生物素、維生素 B12、對胺基苯甲酸與羥脯胺酸。它是淋巴球、融合瘤,以及多數已適應懸浮培養的造血與淋巴系細胞株的標準培養基,一般搭配 10% 胎牛血清使用。
  • HBSS(漢克氏平衡鹽溶液) HBSS(漢克氏平衡鹽溶液)是一種等滲透壓的平衡鹽溶液,用於清洗細胞、運送組織、稀釋試劑,以及讓細胞離開生長培養基後短時間暫存。它含有 8.0 g/L 氯化鈉、1.0 g/L D-葡萄糖、磷酸鹽與 350 mg/L 碳酸氫鈉,並分為含鈣與鎂(鈣 1.26 mM、鎂總量約 0.9 mM)以及不含鈣與鎂兩種版本。由於碳酸氫鹽含量偏低,HBSS 是設計給大氣 CO2 環境或密閉容器使用,並不適合在 5% CO2 培養箱中長時間培養。
  • 化學成分明確培養基 化學成分明確培養基(CD 培養基)是指配方中每一種成分的化學身分與濃度都明確已知的細胞培養基——不含血清、不含蛋白質水解物,也不含任何組成未經定義的生物萃取物。它仍然可以含有蛋白質,只要那是序列明確、以已知濃度加入的重組蛋白質;這正是「化學成分明確」與「無蛋白質」屬於兩個不同分類、而非同義詞的原因。化學成分明確培養基消除了血清帶來的批次間變異、外源感染因子風險與法規負擔,是 CHO、HEK293 與融合瘤系統進行生物製劑生產的標準選擇。
  • Trypsin-EDTA Trypsin-EDTA 是一種細胞解離試劑,結合了絲胺酸蛋白酶胰蛋白酶與螯合劑 EDTA:胰蛋白酶會在細胞表面蛋白與基質蛋白的離胺酸、精胺酸殘基的 C 端側切斷胜肽鍵,EDTA 則結合細胞黏附分子所需的鈣離子與鎂離子。它配製於不含鈣與鎂的平衡鹽溶液中,最常見的規格是供一般細胞株繼代培養使用的 0.05% 胰蛋白酶(0.5 g/L),以及供貼附牢固的細胞與初代培養使用的 0.25%(2.5 g/L)。典型用法是在 37 °C 下作用 2-5 分鐘,之後立即以含血清培養基或明確定義的胰蛋白酶抑制劑終止反應。

參考文獻

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