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細胞培養中的 HEPES 緩衝液

重點摘要

HEPES(4-(2-羥乙基)-1-哌嗪乙磺酸)是一種兩性離子有機緩衝液,用於細胞培養中,不必依賴培養箱 CO2 就能把培養基維持在生理 pH。它的 pKa 在 20-25 °C 約為 7.5、在 37 °C 約為 7.3,有效緩衝範圍大致涵蓋 pH 6.8-8.2,一般由無菌 1 M 儲備液以 10-25 mM 加入培養基。由於 HEPES 的緩衝作用不依賴碳酸/碳酸氫鹽平衡,添加 HEPES 的培養基在培養瓶離開 5% CO2 培養箱時,能抵抗快速的鹼性漂移。

HEPES 是什麼

HEPES 的全名是 4-(2-羥乙基)-1-哌嗪乙磺酸(4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid),CAS 編號 7365-45-9,游離酸形式的分子量為 238.30 g/mol。它屬於 1960 年代由 Norman Good 及其同事提出的兩性離子緩衝液家族,這一系列緩衝液是專為生物實驗、依據一份條件清單篩選出來的:pKa 落在生理範圍、水溶性高、幾乎不穿透細胞膜、在可見光與近紫外光區吸收低、化學性質穩定,而且不太會與金屬離子形成錯合物。

這些設計條件,正是 HEPES 取代舊式有機緩衝液的原因。一種能自由穿過細胞膜的緩衝液,會連細胞質一起緩衝,干擾細胞內 pH。一種會螯合鈣、鎂、鋅或鐵的緩衝液,會把配方中的微量金屬抽走,讓細胞行為出現看起來像生物學結果的變化。HEPES 在這兩點上都表現得相當好,因此成為哺乳類細胞培養預設的補充型緩衝液。

HEPES 有兩種化學形式在販售,配製儲備液時這個差異很重要。游離酸(分子量 238.30)溶解後呈強酸性,必須用氫氧化鈉往上滴定到工作 pH。鈉鹽(HEPES-Na,分子量 260.29)溶解後呈鹼性,需要用鹽酸往下滴定。細胞培養用的現成 1 M 溶液已經滴定到 pH 7.0-7.6 區間並經過過濾除菌,省去滴定步驟,也免除隨之而來的鈉負荷不確定性。

有一點經常被誤解:HEPES 是緩衝劑,不是營養素。它對細胞代謝毫無貢獻。相對地,碳酸氫鹽既是緩衝劑也是代謝受質,供應細胞確實需要的羧化反應。這就是為什麼 HEPES 是用來補充碳酸氫鹽系統,而不是取代它。

HEPES 的 pH 範圍與 pKa,以及兩者為何隨溫度變動

HEPES 在 25 °C 的 pKa 約為 7.48,有效緩衝範圍大致從 pH 6.8 到 8.2。緩衝液在其 pKa 上下約一個 pH 單位的範圍內效果最好,而生理培養 pH 7.2-7.4 幾乎正好落在 HEPES 的 pKa 上。這就是使用它的全部理由:緩衝液的最大容量點,恰好就在細胞需要的位置。

實務上的麻煩在於,HEPES 的 pKa 會隨溫度變動:溫度每升高 1 °C,pKa 大約下降 0.014 個 pH 單位。後果很具體,而且經常有人栽在這裡。在 22 °C 的實驗檯上滴定到 pH 7.4 的 HEPES 溶液,等它在培養箱裡於 37 °C 達到平衡後,讀值會接近 pH 7.2。如果你的實驗依賴工作溫度下的明確 pH,就應該直接在 37 °C 滴定儲備液,或在室溫下刻意滴定到較高的設定值,並在使用前於 37 °C 確認實際數值。

供應商文獻上引用的 pKa 數字略有出入(37 °C 為 7.31、25 °C 為 7.48、20 °C 為 7.55,這幾個數值都在流通),那是因為它們是在不同溫度與離子強度下報告的。這些數值彼此並不衝突,而是同一條溫度曲線上的不同取樣點。實際操作上重要的是位移的方向與大致幅度,不是小數點後第三位。

離子強度也會讓有效 pKa 略微移動。在生理離子強度的完全培養基中,緩衝行為與表列值已經夠接近,通常不值得特別校正;但這仍然是另一個理由,說明你應該在最終配方中確認 pH,而不是只相信儲備液上的數值。

細胞培養基中的 HEPES 濃度

哺乳類細胞培養的工作範圍是 10-25 mM,其中 25 mM 是最常見的單一選擇,敏感的初代細胞與長時間培養則偏好 10-15 mM。超過大約 25 mM 之後效益趨於平緩,而下文討論的風險開始佔上風;50 mM 以上對許多細胞株具細胞毒性,不用於例行培養。

從 1 M 儲備液稀釋很單純:

目標濃度 每 100 mL 培養基所需 1 M HEPES 每 500 mL 培養基所需 1 M HEPES
10 mM 1.0 mL 5.0 mL
15 mM 1.5 mL 7.5 mL
20 mM 2.0 mL 10.0 mL
25 mM 2.5 mL 12.5 mL

如果你是把 HEPES 加進已經配好的完全培養基,而不是直接購買含 HEPES 的配方,有兩件事必須納入考量。

滲透壓會上升。 1 M HEPES 溶液的濃度遠高於接受它的培養基,加進去會提高總滲透壓。哺乳類培養基通常落在 260-320 mOsmol/kg,若某個配方本來就接近上限,在工作範圍的上緣加入 HEPES 就可能把它推過頭。標示「含 HEPES」販售的培養基會降低氯化鈉含量來補償;自己補充的培養基不會。如果你處理的是對滲透壓敏感的細胞,請實際量測。

鈉負荷會上升。 把 HEPES 游離酸滴定到 pH 7.4 大約需要一個當量的氫氧化鈉,因此加入 25 mM HEPES 會帶進相當量的額外鈉。在例行培養中這可以忽略;在電生理或需要嚴格控制滲透壓的工作中則不行。

加入 HEPES 時,不要把配方中的碳酸氫鈉移除。標準做法是:碳酸氫鹽維持在與培養箱設定相符的濃度,再額外加上 HEPES,兩者都在做有用的事。

HEPES 與碳酸氫鹽:兩種緩衝液各自在做什麼

幾乎所有經典培養基的預設緩衝系統,都是碳酸氫鈉搭配培養箱氣氛中的 CO2。溶解的 CO2 水合成碳酸,再解離為碳酸氫根與質子。培養基最終穩定在哪個 pH,由培養基中碳酸氫鹽濃度與溶解 CO2 濃度的比值決定,這正是配方中碳酸氫鹽含量必須與培養箱氣體設定相匹配的原因。碳酸氫鈉 3.7 g/L 的 DMEM 培養基是為 10% CO2 氣氛設計的;1.5-2.2 g/L 的配方則是為 5% CO2 設計的。把 3.7 g/L 的配方放在 5% CO2 下使用,培養基會持續偏鹼。

碳酸氫鹽系統的弱點在於,它有一半是氣體。把培養瓶拿出培養箱,CO2 就會從培養基逸散到室內空氣中,而室內空氣的 CO2 大約只有 0.04%。碳酸氫鹽留在原地,比值改變,pH 隨之上升。在層流操作櫃下,只靠碳酸氫鹽緩衝的培養基可能在十到二十分鐘內就明顯偏鹼;若培養基含酚紅,你可以親眼看著它由紅色轉向紫色。

HEPES 沒有會揮發的組成。它的緩衝容量由你加入的量決定,與周遭氣氛無關。這就是讓它有價值的那個唯一特性,也解釋了所有值得使用 HEPES 的情境。

代價是:HEPES 不提供細胞在羧化反應中會消耗的碳酸氫根,也無法重現生理上的緩衝化學。完全以 HEPES 取代碳酸氫鹽,會讓許多細胞株生長變慢或停止。幾乎在所有情況下,正確的配置都是兩者並用。

碳酸氫鹽/CO2 HEPES
依賴培養箱氣體
同時是代謝受質
在培養箱外維持 pH
每公升成本 較高
光敏感疑慮

什麼時候值得加 HEPES

只要細胞會有一段有意義的時間離開受控的 CO2 氣氛,HEPES 就有它的位置:

  • 在沒有氣體控制的載物台上做活細胞影像。 在室內空氣中進行一小時以上的縮時拍攝是最典型的情況,20-25 mM HEPES 足以在整段期間穩住 pH。
  • 流式細胞術與細胞分選。 分選耗時長,樣本在環境 CO2 下待在管子裡,pH 漂移會在跑完之前就損害存活率。
  • 初代組織解離。 消化作業在實驗檯的空氣中進行,常需 30 分鐘到數小時。含 HEPES 的解離液與保存液正是為此而存在。
  • 活體培養物的運送。 在建築物之間移動或隔夜寄送的培養瓶沒有 CO2 供應。HEPES 搭配裝滿(而非充氣)的培養瓶是標準做法。
  • 頻繁或冗長的操作。 步驟繁多的流程在操作櫃下會累積鹼性漂移;HEPES 可以把它壓平。
  • 神經元與腦片實驗。 長時間的電生理與神經元保存液,正是基於同樣的理由例行使用 HEPES。

反過來說,如果培養物就是放進 5% CO2 培養箱、一週餵兩次、其餘時間不去動它,那麼 HEPES 帶來的只是成本與光化學風險,效益卻很小。它不是例行添加物,而是針對特定問題的解法。

注意事項:光照、細胞毒性與檢測干擾

光照問題是真實存在的,也是最常被忽略的一項。 Zigler 及其同事在 1985 年指出,在 RPMI 1640 中加入 HEPES 後,培養基暴露於可見光時會明顯增加細胞毒性產物的生成,並指認過氧化氫是主要的細胞毒性物質。這個反應只需要 HEPES 與核黃素加上光線;培養基中的其他成分並非必要。在他們的實驗中,把一半的培養基先照光三小時再加入細胞,胸苷攝取就被完全抑制。

由此得到的實務原則很簡單:HEPES 儲備液與含 HEPES 的培養基要避光保存,瓶子不要長時間放在明亮的實驗檯上,也不要在有照明的顯微鏡載物台上停留超過必要的時間;當含 HEPES 的培養基在燈光下放置後出現無法解釋的毒性時,應該把它列為第一嫌疑。幾乎每一家供應商都為 HEPES 標註「避光保存」,原因就在這裡。

濃度相關的細胞毒性。 超過 10-25 mM 的工作範圍之後,HEPES 本身對許多細胞類型就會構成問題。並沒有一個適用於所有細胞株的單一閾值;如果你要用到 25 mM 以上,請在自己的系統中以存活率讀值做滴定,而不是憑假設。

檢測干擾。 HEPES 並不是在任何情境下都化學惰性。它會參與自由基化學反應,對某些金屬氧化物可以作為還原劑,其磺酸基也可能干擾特定的蛋白質與金屬結合分析。當一項對緩衝液敏感的檢測給出意外結果時,緩衝液是合理的懷疑對象。

HEPES 不能取代無菌或穩定性措施。 它不會減緩麩醯胺酸降解,不會抑制微生物生長,也不會延長培養基的可用期限。

HEPES 儲備液的配製、滅菌與保存

要從游離酸配製 1 L 的 1 M HEPES,先把 238.30 g 溶於約 800 mL 細胞培養級的水中,以氫氧化鈉(通常用 5 M 或 10 M,以減少稀釋)滴定到目標 pH,定容至 1 L,再通過 0.22 微米濾膜過濾除菌。細胞培養用的儲備液以過濾除菌優於高壓滅菌;加熱處理可能讓 HEPES 溶液變色,而且沒有任何好處足以抵銷這個風險。

影響成品品質的幾個重點:

  1. 使用品質明確的水。 HEPES 儲備液會直接加進細胞賴以生存的培養基,因此水質會原封不動地帶進去。有明確低內毒素規格的細胞培養級蒸餾水才是正確的原料;內毒素含量不明的實驗室去離子水則不是。
  2. 在你打算使用的溫度下滴定。 見上面的 pKa 一節。室溫讀值不等於培養箱中的數值。
  3. 過濾,不要高壓滅菌。 0.22 微米,並標註日期。
  4. 低溫避光保存。 液態儲備液一般保存於 2-8 °C 並避光。粉末較不敏感,通常在室溫下避光保存即可。
  5. 留意內毒素。 緩衝液是內毒素進入培養系統中常見、卻很少被檢查的途徑。如果你的工作對內毒素敏感(初代免疫細胞、幹細胞,或任何朝法規應用發展的項目),請使用有明確內毒素規格的儲備液,而不是用規格不明的試劑自行配製。

對於要用粉末大量配製培養基的實驗室來說,購買 HEPES 粉末自行滴定,每莫耳成本比購買無菌 1 M 溶液便宜得多。對於一次只補充幾瓶完全培養基的實驗室,無菌 1 M 溶液才是務實的選擇:不用秤重、不用滴定、不用過濾,也沒有機會用自製的儲備液污染一整批培養基。

細胞培養常用緩衝系統的 pKa 與 CO2 依賴性比較
緩衝系統pKa(約略值,25 °C)有效 pH 範圍是否需要 CO2 培養箱典型工作濃度主要限制
碳酸氫鈉/CO26.1(碳酸)實務上為 6.8-7.8需要 —— 必須與配方相匹配1.5-3.7 g/L NaHCO3離開培養箱後數分鐘內 pH 就往鹼性漂移
HEPES7.486.8-8.2不需要10-25 mM在光照下與核黃素反應生成過氧化氫;高濃度時具細胞毒性
磷酸鹽(H2PO4-/HPO4 2-)7.206.2-8.2不需要PBS/DPBS 中約 10 mM會與鈣形成沉澱;不適合作為生長培養基;沒有營養功能
MOPS7.206.5-7.9不需要10-25 mM在哺乳類培養中較少見;主要用於特殊配方與微生物培養基
HEPES 加碳酸氫鹽(併用)7.48 與 6.16.8-8.2碳酸氫鹽的部分需要10-25 mM HEPES 加標準量的 NaHCO3滲透壓較高;仍然對光敏感

常見問題

HEPES 緩衝液的 pH 範圍是多少?

HEPES 的有效緩衝範圍大約從 pH 6.8 到 8.2,也就是它在 25 °C 下 pKa 7.48 的上下各約一個 pH 單位。生理培養 pH 7.2-7.4 幾乎正好落在這個 pKa 上,因此緩衝液的最大容量點,恰好就在細胞需要的位置。一旦超出 6.8-8.2,緩衝容量會迅速下降,HEPES 也就不再有用。

細胞培養基中的 HEPES 該用什麼濃度?

在細胞培養基中,10-25 mM 基本上涵蓋所有例行用途,其中 25 mM 是最常見的單一選擇,敏感的初代細胞或長時間培養則偏好 10-15 mM。以 1 M 儲備液計算,就是每 100 mL 培養基加 1-2.5 mL。超過 25 mM 幾乎不會再增加緩衝力,反而對許多細胞類型產生細胞毒性。

HEPES 的 pKa 是多少?

在 25 °C 約為 7.48,到 37 °C 會降到大約 7.3。溫度每升高 1 °C,pKa 約下降 0.014 個 pH 單位,因此在實驗檯上滴定到 pH 7.4 的溶液,進了培養箱後會比較接近 pH 7.2。有效緩衝範圍大約從 pH 6.8 到 8.2。

HEPES 可以取代碳酸氫鈉嗎?

不行。HEPES 是補充碳酸氫鹽,而不是取代它。碳酸氫鹽既是緩衝劑,也是細胞在羧化反應中會消耗的代謝受質,把它拿掉會讓許多細胞株生長變慢或停止。碳酸氫鹽濃度要維持在與培養箱 CO2 設定相符的水準,HEPES 則是額外加上去。

含 HEPES 的培養基可以在培養箱外放多久?

在 20-25 mM 下,HEPES 可以讓培養基在室內空氣中維持接近生理 pH 達一小時以上,足以應付影像拍攝、細胞分選與組織解離。只靠碳酸氫鹽的培養基在操作櫃下十到二十分鐘內就可能明顯偏鹼。不過極限不只在緩衝液:溫度、蒸發與細胞代謝都還在進行,HEPES 買到的是 pH 穩定,不是無限期的培養。

為什麼含 HEPES 的培養基放在燈光下之後好像會殺死細胞?

HEPES 會在可見光下與培養基中的核黃素發生光化學反應,產生具細胞毒性的過氧化氫。Zigler 及其同事在 1985 年於 RPMI 1640 中證實了這一點,顯示只要照光幾小時就足以完全抑制胸苷攝取。請把 HEPES 儲備液與含 HEPES 的培養基避光保存,不要把瓶子留在有照明的實驗檯上。

應該買 HEPES 游離酸還是鈉鹽?

取決於你要怎麼滴定。游離酸(分子量 238.30)溶解後呈酸性,用氫氧化鈉往上調;鈉鹽(分子量 260.29)溶解後呈鹼性,用鹽酸往下調。兩者最後得到的緩衝液相同。如果你想完全省掉滴定,就買已經調整到 pH 7.0-7.6 區間的現成無菌 1 M 溶液。

HEPES 溶液可以高壓滅菌嗎?

細胞培養用的儲備液建議以 0.22 微米濾膜過濾除菌。HEPES 溶液在高壓滅菌時可能變色,而且儲備液會直接加進培養基,沒有任何好處足以支持用加熱處理。請過濾、標註日期,並保存於 2-8 °C 避光環境。

加入 HEPES 會改變培養基的滲透壓嗎?

會。1 M 儲備液的濃度遠高於接受它的培養基,因此補充後會把總滲透壓推高,超出常見的 260-320 mOsmol/kg 範圍。預先配好含 HEPES 的市售培養基會降低氯化鈉來補償;自己補充的培養基不會。對滲透壓敏感的細胞,請實際量測最終滲透壓,不要用猜的。

HEPES 適合初代細胞與幹細胞嗎?

適合,而且在初代細胞工作的組織解離與暫存步驟中被廣泛使用,因為這些材料會長時間離開 CO2 氣氛。對敏感細胞請使用範圍的低端(10-15 mM),選用有明確低內毒素規格的儲備液,並全程避光。

為什麼說 HEPES 不依賴 CO2?

因為它的酸鹼對雙方都不是氣體。碳酸氫鹽緩衝依賴溶解的 CO2,所以 pH 由培養箱氣氛決定,CO2 一逸散到室內空氣中,pH 就上升。HEPES 的緩衝容量由溶解的量決定,不受周圍氣體影響,這就是它能在顯微鏡載物台或開放實驗檯上穩住 pH 的原因。

HEPES 會干擾我的檢測嗎?

有可能。HEPES 會參與自由基化學反應,對某些金屬氧化物可以作為還原劑,其磺酸基也可能影響特定的蛋白質與金屬結合測定。如果一項對緩衝液敏感的檢測在含 HEPES 的培養基中表現異常,請先與只用碳酸氫鹽的對照組比較,再從生物學角度解讀結果。

HEPES 應該一直放在培養基裡,還是需要時才加?

需要時才加。對於住在 5% CO2 培養箱、一週只被短暫操作兩次的培養物,HEPES 只是增加成本與光化學風險,並沒有解決你實際遇到的問題。影像拍攝、細胞分選、組織解離、運送,以及任何需要長時間在實驗檯上操作的流程,才是該加的時候。

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延伸閱讀

  • HBSS(漢克氏平衡鹽溶液) HBSS(漢克氏平衡鹽溶液)是一種等滲透壓的平衡鹽溶液,用於清洗細胞、運送組織、稀釋試劑,以及讓細胞離開生長培養基後短時間暫存。它含有 8.0 g/L 氯化鈉、1.0 g/L D-葡萄糖、磷酸鹽與 350 mg/L 碳酸氫鈉,並分為含鈣與鎂(鈣 1.26 mM、鎂總量約 0.9 mM)以及不含鈣與鎂兩種版本。由於碳酸氫鹽含量偏低,HBSS 是設計給大氣 CO2 環境或密閉容器使用,並不適合在 5% CO2 培養箱中長時間培養。
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  • DMEM(Dulbecco 改良 Eagle 培養基) DMEM 是把 Eagle 最低必需培養基的胺基酸與維生素濃度提高約四倍而來的基礎細胞培養基。它有高葡萄糖(4,500 mg/L,25 mM)與低葡萄糖(1,000 mg/L,5.6 mM)兩種型式,以 3,700 mg/L 碳酸氫鈉緩衝,必須另外添加血清或定義明確的添加物,並搭配 CO2 環境才能維持生理 pH。DMEM 是 HEK293、HeLa、NIH/3T3、Vero 與貼壁型 CHO 等貼壁細胞株,以及大多數初代纖維母細胞的預設培養基。
  • RPMI 1640 培養基 RPMI 1640 是一種基礎細胞培養基,1966 年由羅斯威爾帕克紀念研究所為了在懸浮狀態下培養人類白血球而開發。它含有 2,000 mg/L 葡萄糖(11.1 mM)、2,000 mg/L 碳酸氫鈉(23.8 mM,為 5% CO2 環境而設定的緩衝)、異常高的磷酸鹽(約 5.6 mM)、偏低的鈣(約 0.42 mM),以及一組相當特殊的成分——還原型麩胱甘肽、生物素、維生素 B12、對胺基苯甲酸與羥脯胺酸。它是淋巴球、融合瘤,以及多數已適應懸浮培養的造血與淋巴系細胞株的標準培養基,一般搭配 10% 胎牛血清使用。
  • Trypsin-EDTA Trypsin-EDTA 是一種細胞解離試劑,結合了絲胺酸蛋白酶胰蛋白酶與螯合劑 EDTA:胰蛋白酶會在細胞表面蛋白與基質蛋白的離胺酸、精胺酸殘基的 C 端側切斷胜肽鍵,EDTA 則結合細胞黏附分子所需的鈣離子與鎂離子。它配製於不含鈣與鎂的平衡鹽溶液中,最常見的規格是供一般細胞株繼代培養使用的 0.05% 胰蛋白酶(0.5 g/L),以及供貼附牢固的細胞與初代培養使用的 0.25%(2.5 g/L)。典型用法是在 37 °C 下作用 2-5 分鐘,之後立即以含血清培養基或明確定義的胰蛋白酶抑制劑終止反應。

參考文獻

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